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Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie

Forschungseinrichtung der Max-Planck-Gesellschaft
(Weitergeleitet von Kaiser-Wilhelm-Institut für Arbeitsphysiologie)

Das Max-Planck-Institut (MPI) für molekulare Physiologie ist eine Forschungseinrichtung der Max-Planck-Gesellschaft mit Sitz in Dortmund. Das Institut betreibt biomedizinische Grundlagenforschung und verfolgt dabei ein interdisziplinäres Konzept. Vier wissenschaftliche Abteilungen arbeiten an den Schnittstellen von molekularer Zellbiologie, Systembiologie, Strukturbiochemie und chemischer Biologie.

Max-Planck-Institut für
molekulare Physiologie
Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie
MPI Dortmund
Kategorie: Forschungseinrichtung
Träger: Max-Planck-Gesellschaft
Rechtsform des Trägers: Eingetragener Verein
Sitz des Trägers: München
Standort der Einrichtung: Dortmund
Art der Forschung: Grundlagenforschung
Fächer: Naturwissenschaften
Fachgebiete: Zellbiologie, Systembiologie, Strukturbiologie, Chemische Biologie
Grundfinanzierung: Bund (50 %), Länder (50 %)
Mitarbeiter: ca. 500
Homepage: www.mpi-dortmund.mpg.de

Der Forschungsschwerpunkt liegt auf dem ganzheitlichen Verständnis der Wirkungsweise von Biomolekülen und deren dynamischen Interaktionen in der Zelle, und wie diese die Eigenschaften und das Verhalten der Zelle und letztendlich eines lebenden Systems bestimmen. Ausgehend von der Aufklärung der Struktur von Proteinen und ihrer Komplexe mittels hochauflösender Kryoelektronenmikroskopie und Röntgenkristallographie, werden Erkenntnisse gewonnen, wie intrazelluläre Prozesse, wie z. B. die Erkennung und Weiterleitung von Signalen, auf molekularer Ebene ablaufen. Die Identifizierung und Synthese naturstoffnaher kleiner Moleküle ermöglicht die zielgenaue Modulierung biologischer Prozesse und die Verfolgung von komplexen Signalwegen in der Zelle. Zur Darstellung intrazellulärer Prozesse, die insbesondere durch die Lokalisierung und Wechselwirkung von Proteinen bestimmt sind, werden moderne fluoreszenzmikroskopische Verfahren wie z. B. die Fluoreszenzlebensdauer-Mikroskopie (FLIM) eingesetzt. Das Zusammenwirken der in den vier Abteilungen eingesetzten Verfahren ermöglicht detaillierte Einblicke in das von hoher Dynamik geprägte Signalleitungsnetzwerk der Zelle und vermittelt ein Verständnis der molekularen Ursachen von Krankheiten wie Krebs. Ein wichtiger Aspekt der Forschung ist die Beeinflussung krankheitsauslösender Prozesse mit innovativen Wirkstoffen, die als Grundlage für die Entwicklung neuartiger Therapieansätze dienen. Ein am Institut entwickelter potentieller Ansatz für die Krebstherapie beruht auf der Modulation des Aufenthaltsortes des Krebsproteins Ras in der Zelle. Durch gezielte Manipulation des Transports dieses Signalproteins mittels eines dafür im Institut entwickelten Hemmstoffes konnte das Wachstum von Krebszellen reduziert werden.[1][2]

Geschichte

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Das Kaiser-Wilhelm-Institut für Arbeitsphysiologie wurde 1913 in Berlin gegründet. Der erste Direktor war Max Rubner. Das Institut wurde 1929 nach Dortmund mit einer Zweigstelle in Münster verlegt. Kriegsbedingt wurde das Institut 1943 nach Bad Ems und Diez an der Lahn verlegt. Nach dem Zweiten Weltkrieg wurde das Institut in Dortmund am Rheinlanddamm.

1948 wurde das Instituts im Zuge des Übergangs der Kaiser-Wilhelm-Gesellschaft in die Max-Planck-Gesellschaft in Max-Planck-Institut für Arbeitsphysiologie umbenannt. Die Abteilung Ernährungsphysiologie wurde 1956 als selbständiges Max-Planck-Institut für Ernährungsphysiologie ausgegründet. Das MPI für Arbeitsphysiologie wurde 1973 in MPI für Systemphysiologie umbenannt. Das MPI für Ernährungsphysiologie und das MPI für Systemphysiologie wurden im Jahr 1993 zum MPI für molekulare Physiologie zusammengelegt. 1999 zog man in den Neubau am Campus der Universität Dortmund, heute TU Dortmund.

Abteilungen

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Mechanistische Zellbiologie

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Die Abteilung für mechanistische Zellbiologie (Leitung: Andrea Musacchio) beschäftigt sich mit den molekularen Mechanismen der Zellteilung und deren Regulation. Im Fokus der Untersuchungen stehen Proteine, die den Prozess der Chromosomentrennung während der Kernteilung (Mitose) kontrollieren.

Im Verlauf der Mitose werden die aus zwei identischen Schwester-Chromatiden bestehenden Chromosomen, durch den Spindelapparat voneinander getrennt. Es entstehen zwei Tochterkerne die jeweils eines der Schwester-Chromatiden erhalten. Im Fokus der Untersuchungen steht ein komplexes Netzwerk wechselwirkender Proteine und Proteinkomplexe, das die Zellteilung kontrolliert und eine Falschverteilung des genetischen Materials verhindert. Durch strukturelle und funktionelle Analysen des Kinetochors, einem Proteinkomplex, der an die Chromosomen bindet, konnte die Forschungsgruppe wichtige Erkenntnisse über die Regulation der Bindung der Chromosomen an den Spindelapparat gewinnen[3] und grundlegende Befunde zum Aufbau des Kinetochors beitragen.[4] Außerdem konnten bisher unbekannte Interaktionen der Schlüsselproteine eines wichtigen Kontrollmechanismus in der Mitose, des „Spindle assembly checkpoints“, nachgewiesen werden.[5][6]

Systemische Zellbiologie

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Forschungsgegenstand der Abteilung für Systemische Zellbiologie (Leitung: Philippe Bastiaens) ist die Regulation von Signalübertragungsprozessen in der Zelle, die wichtige zelluläre Funktionen wie das Wachstum von Gewebe (Proliferation) oder die Differenzierung in verschiedene Zelltypen bestimmt und somit das Schicksal einer Zelle steuert.

Der Schlüssel zum Verständnis dieser zellulären Entscheidungen liegt in der dynamischen Organisation von Signalproteinen und ihren dynamischen Interaktionen in einem Signalnetzwerk. Störungen in diesen Netzwerken sind die Ursache vieler Krankheiten. Sie können z. B. eine ungebremste Proliferation von Zellen verursachen und zur Entstehung von Krebs führen. Im Fokus der Krebsforschung stehen zwei Schlüsselproteine, das kleine G-Protein Ras und der EGF-Rezeptor, die im MAP-Kinase-Signalweg sowohl Proliferation als auch Differenzierung steuern. Die Forscher der Abteilung konnten zeigen, dass unabhängig vom eintreffenden Signal zwar dieselben Proteine im Signalweg aktiviert werden, durch das Schalten von negativen oder positiven Rückkopplungsmechanismen jedoch unterschiedlich lange aktiviert bleiben.[7] Neben der zeitlichen Variabilität der Proteinaktivität spielt auch die räumliche Verteilung von Proteinen eine entscheidende Rolle. Mittels fluoreszenzmikroskopischer Verfahren wie der Fluoreszenzlebensdauer-Mikroskopie (FLIM) konnte die räumliche enzymatische Abschaltung von Signalen visualisiert werden.[8] Untersuchungen der Lokalisierung des Krebsproteins Ras, das in jedem dritten Tumor verändert vorliegt, deckten eine zuvor unbekannte Dynamik dieses Proteins auf.[9][10] Die Identifizierung und Charakterisierung eines Hilfsproteins,[11] welches für den Transport und die Verteilung von Ras in der Zelle maßgeblich verantwortlich ist, ermöglichte es, einen neuen, innovativen Ansatz in der Krebstherapie zu entwickeln.[1][2]

Strukturbiochemie

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Die Abteilung für Strukturbiochemie (Leitung: Stefan Raunser) konzentriert sich auf strukturelle und funktionelle Analysen von biologisch und medizinisch relevanten Membranproteinen und makromolekularen Komplexen. Forschungsschwerpunkte sind die Untersuchung von molekularen Mechanismen der Muskelkontraktion und der Infektion mit bakteriellen Toxinen. Weiterhin werden Membranproteine untersucht, die maßgeblich an der Synthese, des Transportes und der Homöostase von Cholesterin im Körper beteiligt sind.

Zur Analyse von Proteinstrukturen werden moderne Verfahren der Elektronenmikroskopie und Röntgenkristallographie mit einer Auflösung im atomaren Bereich eingesetzt. Der Einsatz der Kryoelektronenmikroskopie, bei der eine Probe in Millisekunden auf unter 140 °C eingefroren wird, ermöglicht die Strukturanalyse eines Membranproteins in seiner nahezu nativen Lipidumgebung. Dafür wird die Probe unter dem Mikroskop aus verschiedenen Richtungen aufgenommen und zu einem 3D-Datensatz rekonstruiert. Mit dieser Methode konnten erstmals sowohl eine hochaufgelöste Struktur des F-Aktins, Hauptbestandteil der Myofilamente in Muskelzellen, als auch des gesamten Aktin-Tropomyosin-Myosins-Komplexes, der eine zentrale Rolle in der Muskelkontraktion spielt, erzeugt werden.[12][13][14] Diese Befunde sind von medizinischer Relevanz, da Mutationen in den für Aktin codierenden Genen die Ursache für zahlreiche Erkrankungen der Muskeln (Myopathien) und Blutgefäße sein können. Ein weiteres Forschungsziel der Abteilung ist die Aufklärung der Mechanismen, die von Bakterien eingesetzt werden, um Gifte in den von ihnen befallenen Zellen freizusetzen. Den Wissenschaftlern gelang erstmals die hochauflösende Darstellung eines bakteriellen Proteinkomplexes, der einen tödlichen Giftstoff mit einem spritzenähnlichen Mechanismus in die Zelle injiziert.[15][16] Das Verständnis des Transportes von bakteriellen Wirkstoffen kann z. B. für die Entwicklung von biologischen Pestiziden genutzt werden. Die bakteriellen Proteinkomplexe könnten auch Anwendung in der Medizin finden und zur Applikation von Wirkstoffen genutzt werden, um z. B. Medikamente zielgenau in Krebszellen zu transportieren.[17]

Chemische Biologie

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Die Abteilung für Chemische Biologie (Leitung: Herbert Waldmann) forscht an der Schnittstelle von organischer Chemie und Biologie. Forschungsschwerpunkt ist die Identifikation und Entwicklung von wirkstoffartigen, kleinen Molekülen, die als chemische Werkzeuge zur Untersuchung biologisch relevanter Prozesse eingesetzt werden. Dafür werden biochemische Techniken sowie neue Methoden und Strategien in der organischen Synthese von chemischen Verbindungen entwickelt.

Als Vorbild für diese niedermolekularen Verbindungen dienen biologisch aktive kleine Moleküle aus der Natur. Durch evolutionären Druck haben diese Moleküle wichtige Eigenschaften entwickelt, wie z. B. eine hohe Affinität zu Proteinen, und eine hohe Wirksamkeit auf intra- und extrazelluläre Prozesse, wie die Signalweiterleitung oder die Abwehr von Organismen aus der Umwelt. Aufgrund dieser Eigenschaften sind die chemischen Grundgerüste von Naturstoffen ein optimaler Ausgangspunkt für das Design und die Entwicklung neuer biologischer Wirkstoffe und für die Erweiterung von Substanzbibliotheken. Auf Basis einer neuen Klassifikation der chemischen Grundgerüste natürlicher Wirkstoffe[18] und deren Erweiterung um synthetische Substanzen mit biologischer Aktivität,[19] wurde in der Abteilung ein Algorithmus zur Aufdeckung bisher unbekannter Klassen von potentiell wirksamen Substanzen entwickelt.[20] Mittels innovativer Synthesemethoden hergestellte naturstoffnahe Substanzen werden zunächst in zellbasierten Hochdurchsatzverfahren auf ihre Wirksamkeit geprüft und anschließend wird das jeweilige Zielprotein in nachgeschalteten Verfahren wie der Affinitätschromatographie ermittelt.[21][22] Umgekehrt kann auch ausgehend von einem bekannten Zielprotein ein spezifischer Hemmstoff identifiziert werden. Solch ein Zielprotein ist zum Beispiel das Produkt des Onkogens RAS, das in jedem dritten Tumor mutiert vorliegt. Den Wissenschaftlern gelang die Identifizierung und Synthese eines kleinen Moleküls, das die krankheitsauslösende Wirkung von mutierten Ras-Proteinen durch die Störung ihres Transports innerhalb der Zelle unterdrückt.[2]

Emeritusgruppe

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Zurzeit gibt es zwei Emeritusgruppen am Institut. Eine wird von Alfred Wittinghofer geleitet, der von 1993 bis 2009 Direktor der Abteilung Strukturelle Biologie am Institut war und der jetzt Emeritiertes Wissenschaftliches Mitglied ist. Eine weitere Gruppe wird von Roger Goody geleitet, der ehemals Direktor der Abteilung Physikalische Biochemie war.

Assoziierte Einrichtungen

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Zentrum für chemische Genomik (CGC)

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Das Zentrum für chemische Genomik ist eine gemeinschaftliche Einrichtung des MPI für molekulare Physiologie mit mehreren anderen Max-Planck-Instituten (Kohlenforschung in Mülheim an der Ruhr, Züchtungsforschung in Köln, Molekulare Zellbiologie und Genetik in Dresden, Psychiatrie in München und Biochemie in Martinsried). Es wird zusätzlich von mehreren Unternehmen unterstützt, die sich neue Erkenntnisse über Strategien für Medikamente erhoffen. Einige der Arbeitsgruppen sind im direkt neben dem MPI für molekulare Physiologie neu errichteten Biomedizin-Zentrum des Technologieparks Dortmund untergebracht.

Dortmund Protein Facility (DPF)

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Die Dortmund Protein Facility ist eine Hochdurchsatzklonierungs- und Proteinproduktionseinheit für molekulare Physiologie. Mit ihr soll der Gebrauch von Hochdurchsatzmethoden im molekularen Klonieren sowie bei Proteinproduktion und -analyse ermöglicht und gefördert werden.

Compound Management and Screening Center (COMAS)

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Das 2011 gegründete Compound Management and Screening Center eingerichtet am Dortmunder MPI hat die Aufgabe, die zurzeit verstreut vorliegenden Substanzbibliotheken der Max-Planck-Gesellschaft zusammenzuführen und sie koordiniert in biochemischen und zellulären Screens einzusetzen. In einem automatischen −20 °C Substanzlager werden unter idealen Bedingungen chemischen Substanzen gelagert und für eine Verteilung vorbereitet.

International Max Planck Research School in Chemical Biology (IMPRS)

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In Zusammenarbeit mit den Universitäten in Dortmund und Bochum bietet das MPI ein Graduiertenstudium in chemischer Biologie im Rahmen einer International Max Planck Research School (IMPRS) an, das zum Grad eines Doktors der Naturwissenschaften oder aber auch eines Doktors der Philosophie analog zum englischen Ph. D. führt.[23] Die Ausbildung erfolgt in Englisch, nicht zuletzt, da die Zielgruppe vor allem ausländische Studenten sind, die auf diese Weise in Deutschland promovieren. Da das Max-Planck-Institut selbst nicht promotionsberechtigt ist, erfolgt die Promotion an einer der beteiligten Hochschulen nach deren Promotionsordnung. Die IMPRS stellt über die zusätzlichen Qualifikationen eine Bestätigung aus. Die im Rahmen der IMPRS besuchten Vorlesungen werden dabei aber von den beteiligten Hochschulen für die Promotionsvoraussetzungen anerkannt. Nur ein Teil der Doktoranden des Instituts promoviert im Rahmen der IMPRS.

Literatur

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  • Adolf von Harnack: Ansprachen bei der Einweihung des Neubaues des Kaiser-Wilhelm-Instituts für Arbeitsphysiologie. (1929), In: Bernhard Fabian (Hrsg.): Adolf von Harnack – Wissenschaftspolitische Reden und Aufsätze. Olms-Weidmann, Hildesheim/ Zürich/ New York 2001, ISBN 3-487-11369-4, S. 71–74.
  • Theo Plesser, Hans-Ulrich Thamer (Hrsg.): Arbeit, Leistung und Ernährung : vom Kaiser-Wilhelm-Institut für Arbeitsphysiologie in Berlin zum Max-Planck-Institut für Molekulare Physiologie und Leibniz-Institut für Arbeitsforschung in Dortmund. (= Pallas Athene. Band 44). Steiner, Stuttgart 2012, ISBN 978-3-515-10200-1.
  • Max-Planck-Institut für molekulare Physiologie. In: Peter Gruss, Reinhard Rürup, Susanne Kiewitz (Hrsg.): Denkorte. Sandstein Verlag, Dresden 2010, ISBN 978-3-942422-01-7, S. 276–291.
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Einzelnachweise

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  1. ↑ a b mpg.de
  2. ↑ a b c G. Zimmerman, B. Papke, S. Ismail, N. Vartak, A. Chandra, M. Hoffmann, S. A. Hahn, G. Triola, A. Wittinghofer, P. I. Bastiaens, H. Waldmann: Small molecule inhibition of the KRAS-PDEδ interaction impairs oncogenic KRAS signaling. In: Nature. 497(7451), 30. Mai 2013, S. 638–642. doi:10.1038/nature12205. Epub 2013 May 22. PMID 23698361
  3. ↑ A. Petrovic, S. Mosalaganti, J. Keller, M. Mattiuzzo, K. Overlack, V. Krenn, A. De Antoni, S. Wohlgemuth, V. Cecatiello, S. Pasqualato, S. Raunser, A. Musacchio: Modular Assembly of RWD Domains on the Mis12 Complex Underlies Outer Kinetochore Organization. In: Mol Cell. 53, 2014, S. 591–605. PMID 24530301
  4. ↑ F. Basilico, S. Maffini, J. R. Weir, D. Prumbaum, A. M. Rojas, T. Zimniak, A. De Antoni, S. Jeganathan, B. Voss, S. van Gerwen, V. Krenn, L. Massimiliano, A. Valencia, I. R. Vetter, F. Herzog, S. Raunser, S. Pasqualato, A. Musacchio: The pseudo GTPase CENP-M drives human kinetochore assembly. In: Elife. 3, 2014, S. e02978. doi:10.7554/eLife.02978. PMID 25006165
  5. ↑ I. Primorac, J. R. Weir, E. Chiroli, F. Gross, I. Hoffmann, S. van Gerwen, A. Ciliberto, A. Musacchio: Bub3 reads phosphorylated MELT repeats to promote spindle assembly checkpoint signaling. In: Elife. 2, 2013, S. e01030. doi:10.7554/eLife.01030. PMID 24066227
  6. ↑ K. Overlack, I. Primorac, M. Vleugel, V. Krenn, S. Maffini, I. Hoffmann, G. J. Kops, A. Musacchio: A molecular basis for the differential roles of Bub1 and BubR1 in the spindle assembly checkpoint. In: Elife. 4, 2015, S. e05269. doi:10.7554/eLife.05269. PMID 25611342
  7. ↑ S. Santos, P. Verveer, P. I. Bastiaens: Growth factor-induced MAPK network topology shapes Erk response determining PC-12 cell fate. In: Nat Cell Biol. 9(3), 2007, S. 324–330. PMID 17310240
  8. ↑ I. A. Yudushkin, A. Schleifenbaum, A. Kinkhabwala, B. G. Neel, C. Schultz, P. I. Bastiaens: Live-Cell Imaging of Enzyme-Substrate Interaction Reveals Spatial Regulation of PTP1B. In: Science. 315(5808), 2007, S. 115–119. PMID 17204654
  9. ↑ O. Rocks, A. Peyker, M. Kahms, P. J. Verveer, C. Koerner, M. Lumbierres, J. Kuhlmann, H. Waldmann, A. Wittinghofer, P. I. Bastiaens: An acylation cycle regulates localization and activity of palmitoylated Ras isoforms. In: Science. 307, 2005, S. 1746–1752. PMID 15705808
  10. ↑ M. Schmick, S. Vartak, B. Papke, M. Kovacevic, D. Truxius, L. Rossmannek, P. I. Bastiaens: KRas Localizes to the Plasma Membrane by Spatial Cycles of Solubilization, Trapping and Vesicular Transport. In: Cell. 157(2), 2014, S. 459–471. PMID 24725411
  11. ↑ A. Chandra, H. Grecco, V. Pisupati, D. Perera, L. Cassidy, F. Skoulidis, S. Ismail, C. Hedberg, M. Hanzal-Bayer, A. Venkitaraman, A. Wittinghofer, P. I. Bastiaens: The GDI-like solubilizing factor PDEδ sustains the spatial organization and signalling of Ras family proteins. In: Nat Cell Biol. 14, 2011, S. 1–13. PMID 22179043
  12. ↑ E. Behrmann, M. Müller, P. A. Penczek, H. G. Mannherz, D. J. Manstein, S. Raunser: Structure of the rigor actin-tropomyosin complex. In: Cell. 150(2), 2012, S. 327–338. PMID 22817895
  13. ↑ J. von der Ecken, M. Müller, W. Lehman, D. J. Manstein, P. A. Penczek, S. Raunser: Structure of the F-actin-tropomyosin complex. In: Nature. 519(7541), 2015, S. 114–117 (2015) PMID 25470062
  14. ↑ J. von der Ecken, S. M. Heissler, S. Pathan-Chhatbar, D. J. Manstein, S. Raunser: Cryo-EM structure of a human cytoplasmic actomyosin complex at near-atomic resolution. In: Nature. 534(7609), 2016, S. 724–728 (2016) PMID 27324845
  15. ↑ C. Gatsogiannis, A. E. Lang, D. Meusch, V. Pfaumann, O. Hofnagel, R. Benz, K. Aktories, S. Raunser: A syringe-like injection mechanism on Photorhabdus luminescens toxins. In: Nature. 495(7442), 2013, S. 520–523. PMID 23515159
  16. ↑ D. Meusch, C. Gatsogiannis, R. G. Efremov, A. E. Lang, O. Hofnagel, I. R. Vetter, K. Aktories, S. Raunser: Mechanism of Tc toxin action revealed in molecular detail. In: Nature. 508(7494), 2014, S. 61–65. PMID 24572368
  17. ↑ laborundmore.com
  18. ↑ M. A. Koch, A. Schuffenhauer, M. Scheck, S. Wetzel, M. Casaulta, A. Odermatt, O. Ertl, H. Waldmann: Charting biologically relevant chemical space: a structural classification of natural products (SCONP). In: Proc Natl Acad Sci USA. 102(48), 2005, S. 17272–17277. PMID 16301544
  19. ↑ R. S. Bon, H. Waldmann: Bioactivity-guided navigation of chemical space. In: Acc Chem Res. 43(8), 2010, S. 1103–1114. PMID 20481515
  20. ↑ S. Wetzel, K. Klein, S. Renner, D. Rauh, T. I. Oprea, P. Mutzel, H. Waldmann: Interactive exploration of chemical space with Scaffold Hunter. In: Nat Chem Biol. 5(8), 2009, S. 581–583. PMID 19561620
  21. ↑ A. Ursu, H. Waldmann: Hide and seek: Identification and confirmation of small molecule protein targets. In: Bioorg Med Chem Lett. 25(16), 2015, S. 3079–3086. PMID 26115575
  22. ↑ S. Ziegler, V. Pries, C. Hedberg, H. Waldmann: Target identification for small bioactive molecules: finding the needle in the haystack. In: Angew Chem Int Ed Engl. 52(10), 2013, S. 2744–2792. PMID 23418026
  23. ↑ siehe Homepage der IMPRS International Max-Planck-Research School in Chemical and Molecular Biology, abgerufen am 23. Juni 2016.

Koordinaten: 51° 29′ 22,8″ N, 7° 24′ 35,3″ O

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