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Herelleviridae

Virenfamilie der Ordnung Caudovirales

Herelleviridae ist die Bezeichnung für eine Familie von Viren mit sog. Kopf-Schwanz-Aufbau (Klasse Caudoviricetes), deren natürlichen Wirte Mitglieder des bakteriellen Phylums Firmicutes sind.[4] Offiziell bestätigt fünf Unterfamilien, 19 Gattungen und 82 Arten (Spezies).[5] Solche Bakterien infizierenden Viren nennt man auch Bakteriophagen.[5][6] Die Herellviridae haben den Morphotyp von Myoviren; die Familie ging aus der früheren Unterfamilie Spounavirinae der inzwischen als Familie aufgelösten Myoviridae hervor.[7][5][6]

Herelleviridae

EM-Aufnahme eines Virions aus der
Gattung Okubovirus (alias Spounalikevirus)

Systematik
Klassifikation: Viren
Realm: Duplodnaviria[2][3]
Reich: Heunggongvirae
Phylum: Uroviricota
Klasse: Caudoviricetes[1]
Ordnung: incertae sedis
Familie: Herelleviridae
Taxonomische Merkmale
Genom: dsDNA linear
Baltimore: Gruppe 1
Symmetrie: ikosaedrisch, tailed
(Myoviren)
Wissenschaftlicher Name
Herelleviridae
Links
ICTV Taxon History: 201906958
NCBI Taxonomy: 2560065
ViralZone (Expasy, SIB): 10338

Etymologie

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Der Name der Familie, Herelle, wurde anlässlich des 100. Jahrestages der Entdeckung der Bakteriophagen zu Ehren ihres Entdeckers Félix d’Hérelle (1873–1994), eines französisch-kanadischen Mikrobiologen vergeben, das Suffix ‚-viridae‘ ist das Standardsuffix für Virenfamilien.[5][6][8]

Beschreibung

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Schemazeichnung eines Virions des Staphylococcus-Phage Twort, Gattung Twortvirus (Querschnitt und Seiten­ansicht). Gleicher Aufbau: Bacillus-Phage SPO1, Gattung Okubovirus.

Morphologie

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Die Virionen (Virusteilchen) der Herelleviridae haben Kopf-Schwanz-Struktur; der Kopf ist ein ikosaedrisches Kapsid mit einem Durchmesser von 85–100 nm. Die Kapside sind nicht umhüllt und zeigen deutliche die Kapsomere, d. h. die Kapsid­unter­einheiten, diese sind in Fünf- und Sechsecken angeordnet, die sich zum ikosaedrischen Kapsid zusammenfügen. Die Kapside können bis zu 35 Proteine beherbergen. Die unkontrahierten Schwänze sind 130–185 nm lang. Der Hals hat eine Grundplatte von ca. 60 nm und einen kleinen Kragen.[5][9][6]

  •  
    Listeria-Phage A511 (Spezies Pecentumvirus A511): Aufbau der Basisplatte und Veränderung während der Absorption an der Zellwand des Wirtsbalterium.

Genom

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Das Genom der Herellevidae ist eine lineare doppelsträngige DNA (dsDNA) mit langen terminalen Wiederholungen (englisch repeats) von 3–16 kbp (Kilo-Basenpaaren) Länge. Die Genome sind 125–170 kbp groß und kodieren etwa 165–301 Gene. Mehrere Introns wurden auch in Herellevirus-Genomen nachgewiesen.[5][9][6]

Replikationszyklus

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Die Replikation findet mit Hilfe DNA-Polymerase der Wirte statt.[5][9][6] Nach den Untersuchungen sind die Phagen dieser Familie obligat lytisch, aber einige können eine anhaltende bzw. pseudolysogene Infektion verursachen.[5][6]

Systematik

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Die Herelleviridae bilden nach allgemeiner Auffassung eine monophyletische Klade, was u. a. durch genombasierten Phylogenien gut unterstützt wird. Die Familienmitglieder haben mindestens 60 % Übereinstimmung in der Nukleotidsequenz.[5][6]

Gemäß ICTV mit Stand Mai 2024 gliedert sich die Familie Herelleviridae wie folgt in Unterfamilien und Gattungen (mit einer Auswahl an Spezies):[10][11][9][8]

Familie Herelleviridae

  • Spezies Agatevirus agate (Bacillus-Virus Agate, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage phiAGATE
  • Spezies Bastillevirus bastille (Bacillus-Virus Bastille, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage Bastille
  • Spezies Agatevirus bobb mit Bacillus-Phage Bobb
  • Spezies Agatevirus Bp8pC mit Bacillus-Phage Bp8p-C und Bacillus-Phage Bp8p-T
  • Spezies Bequatrovirus B4 (Bacillus-Virus B4, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage B4 und B55
  • Spezies Bastillevirus CAM003 mit Bacillus-Phage CAM003
  • Spezies Bastillevirus evoli mit Bacillus-Phage Evoli
  • Spezies Bastillevirus hoodyT mit Bacillus-Phage Hoody T
  • Spezies Caeruleovirus Bc431 (Bacillus-Virus Bc431, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage vB_BceM_Bc431v3
  • Spezies …
  • Spezies Eldridgevirus eldridge mit Bacillus-Phage Eldridge
  • Spezies Goettingenvirus goe8 mit Bacillus-Phage vB_BmeM-Goe8
  • Spezies Grisebachstrassevirus goe3 mit Bacillus-Phage vB_BsuM-Goe3
  • Spezies Jeonjuvirus BSP38 mit Bacillus-Phage BSP38
  • Spezies Matervirus mater mit Bacillus-Phage Mater
  • Spezies Moonbeamvirus moonbeam mit Bacillus-Phage Moonbeam
  • Spezies Nitunavirus grass mit Bacillus-Phage Grass
  • Spezies Nitunavirus NIT1 (Bacillus-Virus NIT1, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage phiNIT1
  • Spezies Nitunavirus SPG24 mit Bacillus-Phage SPG24
  • Spezies Shalavirus Shbh1 mit Bacillus-Phage Shbh1
  • Spezies Siophivirus SIOphi mit Bacillus-Phage SIOphi
  • Spezies Tsarbombavirus BCP78 mit Bacillus-Phage BCP78
  • Spezies Tsarbombavirus BCP78 A mit Bacillus-Phage BCU4
  • Spezies Tsarbombavirus tsarbomba (Bacillus-Virus TsarBomba, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage TsarBomba
  • Spezies Wphvirus WPh (Bacillus-Virus WPh, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage W.Ph.
  • Spezies …
  • Spezies Kochikohdavirus ECP3 (Enterococcus-Virus EF24C, ehem. Typus) mit Enterococcus-Phage EF24C alias φEF24C
  • Spezies …
  • Spezies Schiekvirus EFDG1 (Enterococcus-Virus EFDG1, ehem. Typus) mit Enterococcus-Phage EFDG1
  • Spezies …
  • Spezies Pecentumvirus A511 (Listeria-Virus A511), mit Listeria-Phage A511[12][13][14]
  • Spezies Pecentumvirus list36 mit Listeria-Phage List-36
  • Spezies Pecentumvirus P100 (ehem. Typus) mit Listeria-Phage P100
  • Spezies …
  • Gattung Okubovirus (veraltet: Spo1virus, Spo1likevirus, SPO1-ähnliche Viren)[16]
  • Spezies Okubovirus camphawk (Bacillus-Virus Camphawk) mit Bacillus-Phage CampHawk
  • Spezies Okubovirus SPO1 (Bacillus-Virus SPO1, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage SPO1
  • Spezies Siminovitchvirus CP51 (Bacillus-Virus CP51, ehem. Typus) mit Bacillus-Phage CP-51
  • Spezies Siminovitchvirus JL (Bacillus-Virus JL) mit Bacillus-Phage JL
  • Spezies Siminovitchvirus shanette (Bacillus-Virus Shanette) mit Bacillus-Phage Shanette
  • ohne Gattungszuweisung
  • Spezies „Bacillus phage SP-10“ („Bacillus-Phage SP-10“, SP10)[17]
 
EM-Aufnahme eines Virions der Gattung Twort­virus
  • Spezies Baoshanvirus BS1 (Staphylococcus-Virus BS1) mit Staphylococcus-Phage phiSA_BS1
  • Spezies Baoshanvirus BS2 (Staphylococcus-Virus BS2, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage phiSA_BS2
  • Spezies Kayvirus G1 mit Staphylococcus-Phage G1, Staphylococcus phage 676Z, Staphylococcus-Phage A3R, Staphylococcus-Phage A5W, Staphylococcus-Phage Staph1N, Staphylococcus-Phage Team1, …
  • Spezies Kayvirus G15 mit Staphylococcus-Phage G15 alias Staphylococcus aureus phage GH15 produziert Endolysin LysGH15[18]
  • Spezies Kayvirus JD7 mit Staphylococcus-Phage JD007
  • Spezies Kayvirus kay (Staphylococcus-Virus K, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage K
  • Spezies Kayvirus MCE2014 mit Staphylococcus-Phage MCE-2014
  • Spezies Kayvirus P108 mit Staphylococcus-Phage P108
  • Spezies Kayvirus rodi mit Staphylococcus-Phage phiIPLA-RODI
  • Spezies Kayvirus S253 mit Staphylococcus-Phage S25-3
  • Spezies Kayvirus S254 mit Staphylococcus-Phage S25-4
  • Spezies Kayvirus SA12 mit Staphylococcus-Phage phiSA12
  • Spezies Kayvirus Sb1 mit Staphylococcus-Phage Sb-1
  • Spezies „Staphylococcus phage SA3“ („Staphylococcus-Phage SA3“, φSa3)[19][20][21][22]
  • Spezies Sciuriunavirus SscM1 (Staphylococcus-Virus SscM1, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage vB_SscM-1
  • Spezies Sepunavirus IPLAC1C (Staphylococcus-Virus IPLAC1C, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage vB_SepM_ phiIPLA-C1C
  • Spezies Sepunavirus SEP1 (Staphylococcus-Virus SEP1, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage phiIBB-SEP1
  • Spezies Silviavirus remus (Staphylococcus-Virus Remus, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage vB_SauM_Remus und Staphylococcus-Phage vB_SauM_Romulus
  • Spezies Silviavirus SA11 mit Staphylococcus-Phage SA11
  • Spezies Silviavirus stau2 mit Staphylococcus-Phage Stau2[23]
  • Spezies Twortvirus twort (Staphylococcus-Virus Twort, ehem. Typus) mit Staphylococcus-Phage Twort[25]
  • ohne zugewiesene Unterfamilie
  • Spezies Elpedvirus LpeD mit Lactobacillus-Phage LpeD
  • Spezies Harbinvirus bacchae mit Lactobacillus-Phage Bacchae
  • Spezies Harbinvirus bromius mit Lactobacillus-Phage Bromius
  • Spezies Harbinvirus iacchus mit Lactobacillus-Phage Iacchus
  • Spezies Harbinvirus Lpa804 (Lactobacillus-Virus Lpa804, ehem. Typus) mit Lactobacillus-Phage Lpa804
  • Spezies Harbinvirus semele mit Lactobacillus-Phage Semele
  • Spezies Hopescreekvirus LfeInf mit Lactobacillus-Phage LfeInf
  • Spezies Mooreparkvirus Lb3381 (Lactobacillus-Virus Lb338-1, ehem. Typus) mit Lactobacillus-Phage Lb338-1
  • Spezies Salchichonvirus LP65 (Lactobacillus-Virus LP65, ehem. Typus) mit Lactobacillus-Phage LP65
  • Spezies Lactobacillus-Virus LP65
  • Spezies Tybeckvirus SAC12B mit Lactobacillus-Phage SAC12B
  • Spezies Tybeckvirus tv521B mit Lactobacillus-Phage 521B
  • Spezies Watanabevirus wv3521 mit Lactobacillus-Phage 3-521

Weitere Vorschläge findet man bei NCBI.[29]

Einzelnachweise

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  1. ↑ ICTV: ICTV Master Species List 2021.v2, New MSL including some corrections.
  2. ↑ ICTV: ICTV Master Species List 2019.v1, New MSL including all taxa updates since the 2018b release, March 2020 (MSL #35)
  3. ↑ ICTV: ICTV Master Species List 2020.v1, New MSL including all taxa updates since the 2019 release, March 2021 (MSL #36)
  4. ↑ Jakub Barylski, Andrew M. Kropinski, Nabil-Fareed Alikhan, Evelien M. Adriaenssens, ICTV Report Consortium: ICTV Virus Taxonomy Profile: Herelleviridae. In: The Journal of General Virology. 101. Jahrgang, Nr. 4, April 2020, S. 362–363, doi:10.1099/jgv.0.001392, PMID 32022658 (englisch).
  5. ↑ a b c d e f g h i Jakub Barylski, Andrew M. Kropinski, Nabil-Fareed Alikhan, Evelien M. Adriaenssens: ICTV Report Herelleviridae. 2020; (englisch). Via ictvonline (Memento vom 20. September 2020 im Internet Archive).
  6. ↑ a b c d e f g h Jakub Barylski, François Enault, Bas E. Dutilh, Margo B. P. Schuller, Robert A. Edwards, Annika Gillis, Jochen Klumpp, Petar Knezevic, Mart Krupovic, Jens H. Kuhn, Rob Lavigne, Hanna Maarit Oksanen, Matthew B. Sullivan, Ho Bin Jang, Peter Simmonds, Pakorn Aiewsakun, Johannes Wittmann, Igor Tolstoy, J. Rodney Brister, Andrew M. Kropinski (2020). Taxonomy proposal: To create one (1) new family, Herelleviridae, in the order Caudovirales. University of Helsinki.
  7. ↑ Dann Turner, Andrew M. Kropinski, Evelien M. Adriaenssens: A Roadmap for Genome-Based Phage Taxonomy, in: MDPI Viruses Band 13, Nr. 3, Section Bacterial Viruses, 18. März 2021, 506, doi:10.3390/v13030506
  8. ↑ a b Jakub Barylski, François Enault, Bas E. Dutilh, Margo B. P. Schuller, Robert A. Edwards, Annika Gillis, Jochen Klumpp, Petar Knezevic, Mart Krupovic, Jens H. Kuhn et al.: Analysis of Spounaviruses as a Case Study for the Overdue Reclassification of Tailed Phages. In: Systematic Biology, Band 69, Nr. 1, Januar 2020, S. 110–123; doi:10.1093/sysbio/syz036, Epub 25. Mai 2019 (englisch)
  9. ↑ a b c d SIB: sdDNA §Caudovirales:Herelleviridae. Viralzone.
  10. ↑ ICTV: Taxonomy Browser.
  11. ↑ ICTV: Virus Metadata Resource (VMR).
  12. ↑ ICTV: ICTV Taxonomy history: Listeria virus A511
  13. ↑ NCBI: Listeria virus A511 (species)
  14. ↑ Matthew Dunne, Mario Hupfeld, Jochen Klumpp, Martin J. Loessner: Molecular Basis of Bacterial Host Interactions by Gram-Positive Targeting Bacteriophages, in: MDPI Viruses, Band 10, Nr. 8, Special Issue Phage-Host Interactions, 397, 28. Juli 2018, doi:10.3390/v10080397.
  15. ↑ Jakub Barylski, François Enault, Bas E. Dutilh, Margo B. P. Schuller, Robert A. Edwards, Annika Gillis, Jochen Klumpp, Petar Knezevic, Mart Krupovic, Jens H. Kuhn et al.: Analysis of Spounaviruses as a Case Study for the Overdue Reclassification of Tailed Phages, in: Systematic Biology, Band 69, Nr. 1, Januar 2020, S. 110–123, Epub 25. Mai 2019, doi:10.1093/sysbio/syz036
  16. ↑ SIB: Okubovirus (syn. Spo1virus). Auf: ViralZone.
  17. ↑ NCBI: bacillus-Phage SP-10 (species)
  18. ↑ Angela França, Vânia Gaio, Nathalie Lopes, Luís D. R. Melo: Virulence Factors in Coagulase-Negative Staphylococci. In: MDPI Pathogens, Band 10, Nr. 2,4. Februar 2021, S. 170; doi:10.3390/pathogens10020170, PMID 33557202, PMC 7913919 (freier Volltext) (englisch).
  19. ↑ NCBI: Staphylococcus phage SA3 (species)
  20. ↑ Marta Matuszewska, Gemma G. R. Murray, Xiaoliang Ba, Rhiannon Wood, Mark A. Holmes, Lucy A. Weinert: Stable antibiotic resistance and rapid human adaptation in livestock-associated MRSA. In: eLife, 28. Juni 2022; doi:10.7554/eLife.74819 (englisch). Dazu:
  21. ↑ Romain Guérillot, Xenia Kostoulias, Liam Donovan, Lucy Li, Glen P. Carter, Abderrahman Hachani, Koen Vandelannoote, Stefano Giulieri, Ian R. Monk, Mayu Kunimoto, Lora Starrs, Gaétan Burgio, Torsten Seemann, Anton Y. Peleg, Timothy P. Stinear, and Benjamin P. Howden: Unstable chromosome rearrangements in Staphylococcus aureus cause phenotype switching associated with persistent infections. In: PNAS, Band 116, Nr. 40, 16. September 2019, S. 20135​-2014; doi:10.1073/pnas.1904861116, ResearchGate:335865826 (englisch). Siehe insbes. Fig. 1.
  22. ↑ Vijay Aswani, Fares Najar, Madhulatha Pantrangi, Bob Mau, William R. Schwan & Sanjay K. Shukla: Virulence factor landscape of a Staphylococcus aureus sequence type 45 strain, MCRF184. In: BMC Genomics, Band 20, Nr. 123, 8. Februar 2019, Projekt: MCRF184; doi:10.1186/s12864-018-5394-2; ResearchGate:330978998 (englisch).
  23. ↑ Sue-Er Hsieh, Hsueh-Hsia Lo, Shui-Tu Chen, Mong-Chuan Lee, Yi-Hsiung Tseng: Wide Host Range and Strong Lytic Activity of Staphylococcus aureus Lytic Phage Stau2. In: ASM Journals: Applied and Environmental Microbiology, Band 77, Nr. 3, 27. Januar 2011; doi:10.1128/AEM.01848, PMID 21148689, PMC 3028737 (freier Volltext) (englisch).
  24. ↑ SIB: Twortvirus. Auf: ViralZone.
  25. ↑ Roman Pantůček, J. Doskar, V. Růzicková, P. Kaspárek et al.: Identification of bacteriophage types and their carriage in Staphylococcus aureus. In: Archives of Virology, Band 149, Nr. 9, S. 1689–1703, Oktober 2004; doi:10.1007/s00705-004-0335-6, PMID 15593413 (englisch)
  26. ↑ NCBI: Brochothrix virus A9 (species) – keine Unterfamilie zugeordnet
  27. ↑ Samuel Kilcher, Martin J. Loessner, Jochen Klumpp: Brochothrix thermosphacta bacteriophages feature heterogeneous and highly mosaic genomes and utilize unique prophage insertion sites. In: Journal of Bacteriology, Band 192, Nr. 20, Oktober 2010, S. 5441–5453; doi:10.1128/JB.00709-10, PMID 20709901, PMC 2950505 (freier Volltext), Epub 13. August 2010 (englisch) – veraltet: Myoviridae: Spounavirinae
  28. ↑ Basem Al-Shayeb, Rohan Sachdeva, Lin-Xing Chen, Cindy J. Castelle, Alexander L. Jaffe, Jennifer A. Doudna, Jillian F. Banfield et al.: Clades of huge phage from across Earth’s ecosystems. In: Nature, Band 578, 12. Februar 2020, S. 425–431; doi:10.1038/s41586-020-2007-4 (englisch). Dazu:
  29. ↑ NCBI: Herelleviridae (family)
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