Marnaviridae

Familie der Ordnung Picornavirales

Marnaviridae ist die Bezeichnung einer Familie von positiv-einzelsträngigen RNA-Viren in der Ordnung Picornavirales.[2] Die erste Art (Spezies) dieser Familie, die isoliert wurde (und daher die Typusart der Familie darstellt), ist das Heterosigma akashiwo RNA-Virus (HaRNAV) in der Gattung Marnavirus,[3] das die toxische, blütenbildende Raphidophyten-Alge Heterosigma akashiwo infiziert.[4] Auf Basis von DNA-Sequenzierungen wurden weitere zwanzig marine RNA-Virusspezies in die Familie aufgenommen, verteilt auf sechs Gattungen.[5]

Marnaviridae

EM-Aufnahme von Partikeln des
Heterosigma akashiwo RNA virus
(HaRNAV). Maßstab 50 nm.

Systematik
Klassifikation: Viren
Realm: Riboviria[1]
Reich: Orthornavirae[1]
Phylum: Pisuviricota[1]
Klasse: Pisoniviricetes[1]
Ordnung: Picornavirales
Familie: Marnaviridae
Taxonomische Merkmale
Genom: (+)ssRNA linear
Baltimore: Gruppe 4
Symmetrie: ikosaedrisch
Hülle: keine
Wissenschaftlicher Name
Marnaviridae
Links

HaRNAV wurde aus dem Wasser in der Straße von Georgia in British Columbia (Kanada) isoliert, aus einer konzentrierten Virusansammlung mit dem Wirt Heterosigma akashiwo (NEPCC 522).[6] HaRNAV darf nicht mit anderen Viren verwechselt werden, die diesen Wirt infizieren, wie z. B. dem dsDNA-Virus Heterosigma akashiwo virus 01 (HaV-1, mit Isolat HaV53) aus der Gattung Raphidovirus oder dem „Heterosigma akashiwo Nuclear Inclusion Virus“ (HaNIV, Vorschlag, ?Gattung Protobacilladnavirus).[7][8][9][10]

Beschreibung

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H. akashiwo von der Linie CCMP-452.
 
Schemazeichnung von H. akashiwo
 
Genomkarte der Marnaviridae
 
Schemazeichnung eines Virions der Familie Marnaviridae, Querschnitt und Seitenansicht.[11]
 
Chaetoceros tenuissimus RNA virus 01, Gattung Bacillarnavirus: Die MCPs sind in Grün, Magenta und Cyan eingefärbt und das mCP in Gelb..

Die Viren der Marnaviridae sind nicht umhüllt und haben ikosaedrische Geometrie mit einer Triangulationszahl T=pseudo3. Der Durchmesser beträgt etwa 25 nm. Das Genom ist linear und monopartit (nicht segmentiert), mit einer Länge von ca. 8,6 kb (Kilobasen).[11] Das Kapsid besteht aus drei Hauptkapsidproteinen (major capsid proteins, MCPs: VP1, VP2, VP3), die jeweils eine Jelly-Roll-Faltung aufweisen, und einem Minor-Capsid-Protein (minor capsid proteins, mCP), das sich auf der Innenseite des Kapsids an den Polen der Fünffach-Achse befindet.[12]

Reproduktionszyklus

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Die Replikation folgt dem üblichen Schema für (+)ssRNA-Viren (en. positive stranded RNA virus replication model). Die Transkription folgt ebenfalls dem üblichen Schema für (+)ssRNA-Viren (en. positive stranded RNA virus transcription). Die neu gebildeten Virionen verlassen die Wirtszelle durch tubulusgeführte Virusbewegung (en. tubule-guided viral movement).[11]

Als natürliche Wirte des einzigen gut bekannten Mitglieds HaRNAV der Familie Marnaviridae dient Heterosigma akashiwo (Raphidophyceae). Es wird angenommen, dass auch die anderen Vertreter marines Phytoplankton infizieren.[11]

Systematik

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Negativ-Bild vom NitRevRNAV-Partikeln. Balken: 50 nm.

Die Systematik der Marnaviridae ist nach ICTV mit Stand Mai/Juni 2024 wie folgt:[13][14]

Ordnung Picornavirales

  • Familie Marnaviridae
    • Gattung Bacillarnavirus (drei bestätigte Arten)
      • Spezies Chaetoceros socialis forma radians RNA virus 1 mit Chaetoceros socialis f. radians RNA virus 01 (CsfrRNAV01) – Wirtsgattung Chaetoceros
      • Spezies Chaetoceros tenuissimus RNA virus 01 mit Chaetoceros tenuissimus RNA virus 01 (CtenRNAV01) – Wirtsgattung Chaetoceros
      • Spezies Rhizosolenia setigera RNA virus 01 mit Rhizosolenia setigera RNA virus 01 (RsRNAV01) – Wirtsgattung Rhizosolenia
      • Spezies „Cylindrotheca closterium RNA virus“ (CylClostRNAV) – Wirtsgattung: Cylindrotheca (Cylindrotheca closterium)[15]
      • Spezies „Thalassiosira gravida RNA virus“ (TgraRNAV) – Wirtsgattung Thalassiosira (Thalassiosira gravida)[15]
      • Spezies „Nitzschia reversa RNA virus“ (NitRevRNAV) – Wirtsgattung Nitzschia (N. reversa Stamm KT30)[16][17]
    • Gattung Kusarnavirus (eine Art)
      • Spezies Astarnavirus mit Asterionellopsis glacialis RNA virus (AglaRNAV) – Wirtsgattung Asterionellopsis
    • Gattung Labyrnavirus (eine Art)
      • Spezies Aurantiochytrium single-stranded RNA virus 01 mit Aurantiochytrium single-stranded RNA virus 01 (ASSRNAV01) – Wirtsgattung Aurantiochytrium
    • Gattung Locarnavirus (vier Arten)
      • Spezies Jericarnavirus B mit Marine RNA virus JP-B
      • Spezies Sanfarnavirus 1 mit Marine RNA virus SF-1
      • Spezies Sanfarnavirus 2 mit Marine RNA virus SF-2
      • Spezies Sanfarnavirus 3 mit Marine RNA virus SF-3
    • Gattung Marnavirus (eine bestätigte Art, mehrere vorgeschlagene)[18]
      • Spezies Heterosigma akashiwo RNA virus (HaRNAV) mit Isolat SOG263[19][20] – Wirtsspezies Heterosigma akashiwo
      • Spezies „Forsythia suspensa marnavirus“ – Wirtsspezies Hänge-Forsythie
      • Spezies „Kummerowia striata marnavirus“ – Wirtsgattung Kummerowia
      • Spezies „Lactuca sativa marnavirus“ – Wirtsgattung Lactuca
      • Spezies „Lindernia crustacea marnavirus“ – Wirtsgattung Lindernia
      • Spezies „Trichosanthes kirilowii marnavirus“ – Wirtsspezies Trichosanthes kirilowii
      • Spezies „Zehneria japonica marnavirus“ – Wirtsgattung Zehneria
    • Gattung Salisharnavirus (vier Arten)
      • Spezies Britarnavirus 1 mit Marine RNA virus BC-1
      • Spezies Britarnavirus 4 mit Marine RNA virus BC-4
      • Spezies Palmarnavirus 128 mit Marine RNA virus PAL128
      • Spezies Palmarnavirus 473 mit Marine RNA virus PAL473
    • Gattung Sogarnavirus (sechs Arten)
      • Spezies Britarnavirus 2 mit Marine RNA virus BC-2
      • Spezies Britarnavirus 3 mit Marine RNA virus BC-3
      • Spezies Chaetarnavirus 2 mit Chaetoceros species RNA virus 02 (CspRNAV2)
      • Spezies Chaetenuissarnavirus II mit Chaetoceros tenuissimus RNA virus type II (CtenRNAVII)
      • Spezies Jericarnavirus A mit Marine RNA virus JP-A
      • Spezies Palmarnavirus 156 mit Marine RNA virus PAL156

Einzelnachweise

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  1. a b c d ICTV: ICTV Master Species List 2019.v1, New MSL including all taxa updates since the 2018b release, March 2020 (MSL #35).
  2. Marnaviridae - Positive Sense RNA Viruses - Positive Sense RNA Viruses (2011) - International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). In: International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). Abgerufen am 27. April 2017 (englisch).
  3. Virus Taxonomy: 2014 Release. ICTV, abgerufen am 15. Juni 2015.
  4. A. S. Lang, A. I. Culley, C. A. Suttle: Genome sequence and characterization of a virus (HaRNAV) related to picorna-like viruses that infects the marine toxic bloom-forming alga Heterosigma akashiwo. In: Virology. 320. Jahrgang, Nr. 2, 2004, S. 206–217, doi:10.1016/j.virol.2003.10.015, PMID 15016544.
  5. M. Vlok, A. S. Lang, C. A. Suttle: Application of a sequence-based taxonomic classification method to uncultured and unclassified marine single-stranded RNA viruses in the order Picornavirales. In: Virus Evolution. 31;5(2):vez056. Jahrgang, 2019, doi:10.1093/ve/vez056, PMID 31908848.
  6. Vera Tai, Janice E. Lawrence, Andrew S. Lang, Amy M. Chan, Alexander I. Culley, Curtis A. Suttle: Characterization of HaRNAV, a single-stranded RNA virus causing lysis of Heterosigma akashiwo (Raphidophyceae). In: Journal of Phycology. 39. Jahrgang, Nr. 2, 28. März 2003, S. 206–217, doi:10.1046/j.1529-8817.2003.01162.x.
  7. Janice E. Lawrence, Amy M. Chan, Curtis A. Suttle: A novel virus (HaNIV) causes lysis of the toxic bloom-forming alga Heterosigma akashiwo (Raphidophyceae). In: Journal of Phycology. 37. Jahrgang, Nr. 2, 1. Mai 2002, S. 216–222, doi:10.1046/j.1529-8817.2001.037002216.x.
  8. Y. Bettarel, J. Kan, K. Wang, Kurt E. Williamson, S. Cooney, S. Ribblett, F. Chen, K. Wommack, D. Coats: Isolation and preliminary characterisation of a small nuclear inclusion virus infecting the diatom Chaetoceros cf. gracilis, auf: Semantic Scholar – Biology – Aquatic Microbial Ecology, Corpus ID: 56157535, 2005, doi:10.3354/AME040103. „Chaetoceros nuclear inclusion virus: CspNIV“, „CspNIV shows some strong similarities with Heterosigma akashiwo nuclear inclusion virus (HaNIV)“
  9. Keizo Nagasaki: Dinoflagellates, diatoms, and their viruses, in: The Journal of Microbiology 46(3), Juli 2008, S. 235–243, doi:10.1007/s12275-008-0098-y. „CspNIV shows some strong similarities with Heterosigma akashiwo nuclear inclusion virus (HaNIV)“
  10. Stephanie Boone: Viruses and Algae, Februar 2004
  11. a b c d Viral Zone. ExPASy, abgerufen am 15. Juni 2015.
  12. Anna Munke, Kei Kimura, Yuji Tomaru, Kenta Okamoto: Capsid Structure of a Marine Algal Virus of the Order. In: Journal of Virology. 94. Jahrgang, Nr. 9, 16. April 2020, doi:10.1128/JVI.01855-19.
  13. ICTV: Taxonomy Browser.
  14. ICTV: Virus Metadata Resource (VMR).
  15. a b NCBI Taxonomy Browser: unclassified Bacillarnavirus (Liste).
  16. Kensuke Toyoda, Kei Kimura, Keigo Osada, David M Williams, Tomoko Adachi, Katsumasa Yamada, Yuji Tomaru: Novel marine diatom ssRNA virus NitRevRNAV infecting Nitzschia reversa. In: Plant Ecology and Evolution, Band 152, Nr. 2, 9. Juli 2019, S. 178–187; doi:10.5091/plecevo.2019.1615, ResearchGate:334329754, Epub 26. Oktober 2019 (englisch).
  17. Mohammadreza Sadeghi, Yuji Tomaru, Tero Ahola: RNA Viruses in Aquatic Unicellular Eukaryotes. In: MDPI: Viruses, Band 13, Nr. M3, 25. Februar 2021, S. 362; doi:10.3390/v13030362, PMC 7996518 (freier Volltext), PMID 33668994 (englisch).
  18. NCBI: Marnavirus (genus)
  19. NCBI: Heterosigma akashiwo RNA virus SOG263
  20. UniProt: UniProt: Proteomes - Heterosigma akashiwo RNA virus (strain SOG263)
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