Phenethylprimverosid ist ein natürlich vorkommendes Glycosid aus β-D-Primverose und dem Aglycon 2-Phenylethanol.

Strukturformel
Strukturformel von Phenthylprimverosid
Allgemeines
Name Phenethylprimverosid
Summenformel C19H28O10
Externe Identifikatoren/Datenbanken
CAS-Nummer 129932-48-5
PubChem 14704521
ChemSpider 115929
Wikidata Q105381978
Eigenschaften
Molare Masse 416,4 g·mol−1
Sicherheitshinweise
GHS-Gefahrstoffkennzeichnung
keine Einstufung verfügbar[1]
Soweit möglich und gebräuchlich, werden SI-Einheiten verwendet.
Wenn nicht anders vermerkt, gelten die angegebenen Daten bei Standardbedingungen (0 °C, 1000 hPa).

Vorkommen

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Phenethylprimverosid ist neben Benzylprimverosid, Linalylprimverosid, Geranylprimverosid und (Z)-3-Hexenolprimverosid Bestandteil des Aromas von Tee.[2][3][4][5][6][7] Daneben kommt es auch in Pomelo[8], der Sauerkirsche[9], Ingwer[10], Rosa damascena[11], Olivenbäumen (v. a. den Blättern)[12][13], dem Hundsgiftgewächs Apocynum venetum[14], Alangium platanifolium aus der Gattung Alangium[15], Callianthemum taipaicum aus der Gattung der Schmuckblumen[16] und in Gomphrena celoisiodes[17] vor.

Biosynthese

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Die Biosynthese in Teepflanzen wurde untersucht. Dabei findet eine zweistufige Glycosylierung statt, zuerst mit Glucose, dann mit Xylose. Eine Glycosyltransferase bildet Glucoside von verschiedenen Alkoholen (neben 2-Phenylethanol auch (Z)-3-Hexenol, Linalool und Benzylalkohol). Eine zweite kann dann spezifisch diese Glucoside durch Übertragung von Xylose in Primveroside überführen.[5] Ebenso wurde die Biosynthese in Olivenbäumen untersucht, wo biosynthetische Vorläufer Phenethylamin und 2-Phenylethanol sind.[13]

Eigenschaften

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Phenethylprimverosid inhibiert die C30-Endopeptidase von SARS-CoV-2.[10]

Synthese

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Mittels Umglycosylierung des Primverosids von p-Nitrophenol mittels Penicillium multicolor können diverse andere Primveroside, darunter auch Phenethylprimverosid im Millimol-Maßstab hergestellt werden.[18]

Einzelnachweise

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  1. Dieser Stoff wurde in Bezug auf seine Gefährlichkeit entweder noch nicht eingestuft oder eine verlässliche und zitierfähige Quelle hierzu wurde noch nicht gefunden.
  2. Dongmei Wang, Eriko Kurasawa, Yuichi Yamaguchi, Kikue Kubota, Akio Kobayashi: Analysis of Glycosidically Bound Aroma Precursors in Tea Leaves. 2. Changes in Glycoside Contents and Glycosidase Activities in Tea Leaves during the Black Tea Manufacturing Process. In: Journal of Agricultural and Food Chemistry. Band 49, Nr. 4, 1. April 2001, S. 1900–1903, doi:10.1021/jf001077+.
  3. Wenfei Guo, Ryuji Hosoi, Kanzo Sakata, Naoharu Watanabe, Akihito Yagi, Kazuo Ina, Shaojun Luo: ( S )-Linalyl, 2-Phenylethyl, and Benzyl Disaccharide Glycosides Isolated as Aroma Precursors from Oolong Tea Leaves. In: Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. Band 58, Nr. 8, Januar 1994, S. 1532–1534, doi:10.1271/bbb.58.1532.
  4. Dongmei Wang, Takako Yoshimura, Kikue Kubota, Akio Kobayashi: Analysis of Glycosidically Bound Aroma Precursors in Tea Leaves. 1. Qualitative and Quantitative Analyses of Glycosides with Aglycons as Aroma Compounds. In: Journal of Agricultural and Food Chemistry. Band 48, Nr. 11, 1. November 2000, S. 5411–5418, doi:10.1021/jf000443m.
  5. a b Shoji Ohgami, Eiichiro Ono, Manabu Horikawa, Jun Murata, Koujirou Totsuka, Hiromi Toyonaga, Yukie Ohba, Hideo Dohra, Tatsuo Asai, Kenji Matsui, Masaharu Mizutani, Naoharu Watanabe, Toshiyuki Ohnishi: Volatile Glycosylation in Tea Plants: Sequential Glycosylations for the Biosynthesis of Aroma β -Primeverosides Are Catalyzed by Two Camellia sinensis Glycosyltransferases. In: Plant Physiology. Band 168, Nr. 2, Juni 2015, S. 464–477, doi:10.1104/pp.15.00403, PMID 25922059, PMC 4453793 (freier Volltext).
  6. Masayuki Yoshikawa, Seikou Nakamura, Yasuyo Kato, Koudai Matsuhira, Hisashi Matsuda: Medicinal Flowers. XIV.1) New Acylated Oleanane-Type Triterpene Oligoglycosides with Antiallergic Activity from Flower Buds of Chinese Tea Plant (Camellia sinensis). In: Chemical and Pharmaceutical Bulletin. Band 55, Nr. 4, 2007, S. 598–605, doi:10.1248/cpb.55.598.
  7. Toshio Morikawa, Seikou Nakamura, Yasuyo Kato, Osamu Muraoka, Hisashi Matsuda, Masayuki Yoshikawa: Bioactive Saponins and Glycosides. XXVIII. New Triterpene Saponins, Foliatheasaponins I, II, III, IV, and V, from Tencha (the Leaves of Camellia sinensis). In: CHEMICAL & PHARMACEUTICAL BULLETIN. Band 55, Nr. 2, 2007, S. 293–298, doi:10.1248/cpb.55.293.
  8. Desen Su, Yunyun Zheng, Ziqiang Chen, Yuwu Chi: Simultaneous determination of six glycosidic aroma precursors in pomelo by ultra-high performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry. In: The Analyst. Band 146, Nr. 5, 2021, S. 1698–1704, doi:10.1039/D0AN01705A.
  9. Wilfried Schwab, Gerhard Scheller, Peter Schreier: Glycosidically bound aroma components from sour cherry. In: Phytochemistry. Band 29, Nr. 2, 1990, S. 607–612, doi:10.1016/0031-9422(90)85126-Z.
  10. a b Laleh Babaeekhou, Maryam Ghane, Mahdi Abbas-Mohammadi: In silico targeting SARS-CoV-2 spike protein and main protease by biochemical compounds. In: Biologia. Band 76, Nr. 11, November 2021, S. 3547–3565, doi:10.1007/s11756-021-00881-z, PMID 34565804, PMC 8456686 (freier Volltext).
  11. Wenfei Guo, Ryuji Hosoi, Kanzo Sakata, Naoharu Watanabe, Akihito Yagi, Kazuo Ina, Shaojun Luo: ( S )-Linalyl, 2-Phenylethyl, and Benzyl Disaccharide Glycosides Isolated as Aroma Precursors from Oolong Tea Leaves. In: Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry. Band 58, Nr. 8, Januar 1994, S. 1532–1534, doi:10.1271/bbb.58.1532.
  12. M.E. Alañón, M. Ivanović, A.M. Gómez-Caravaca, D. Arráez-Román, A. Segura-Carretero: Choline chloride derivative-based deep eutectic liquids as novel green alternative solvents for extraction of phenolic compounds from olive leaf. In: Arabian Journal of Chemistry. Band 13, Nr. 1, Januar 2020, S. 1685–1701, doi:10.1016/j.arabjc.2018.01.003.
  13. a b Hiroshi Saimaru, Yutaka Orihara: Biosynthesis of acteoside in cultured cells of Olea europaea. In: Journal of Natural Medicines. Band 64, Nr. 2, April 2010, S. 139–145, doi:10.1007/s11418-009-0383-z.
  14. Toshiyuki Murakami, Akinobu Kishi, Hisashi Matsuda, Masao Hattori, Masayuki Yoshikawa: Medicinal Foodstuffs. XXIV. Chemical Constituents of the Processed Leaves of Apocynum venetum L.: Absolute Stereostructures of Apocynosides I and II. In: Chemical and Pharmaceutical Bulletin. Band 49, Nr. 7, 2001, S. 845–848, doi:10.1248/cpb.49.845.
  15. Hideaki Otsuka, Yasuyuki Takeda, Kazuo Yamasaki: Xyloglucosides of benzyl and phenethyl alcohols and Z-hex-3-en-1-ol from leaves of Alangium platanifolium var. trilobum. In: Phytochemistry. Band 29, Nr. 11, Januar 1990, S. 3681–3683, doi:10.1016/0031-9422(90)85306-Z.
  16. Dong-Mei Wang, Wen-Jun Pu, Yong-Hong Wang, Yu-Juan Zhang, Shan-Shan Wang: A New Isorhamnetin Glycoside and Other Phenolic Compounds from Callianthemum taipaicum. In: Molecules. Band 17, Nr. 4, 17. April 2012, S. 4595–4603, doi:10.3390/molecules17044595, PMID 22510608, PMC 6268643 (freier Volltext).
  17. Do Thi Trang, Bui Huu Tai, Pham Hai Yen, Duong Thi Hai Yen, Nguyen Xuan Nhiem, Phan Van Kiem: Study on water soluble constituentsfrom Gomphrena celoisiodes. In: Vietnam Journal of Chemistry. Band 57, Nr. 2, April 2019, S. 229–233, doi:10.1002/vjch.201900011.
  18. Kazutaka Tsuruhami, Shigeharu Mori, Kanzo Sakata, Satoshi Amarume, Shigetaka Saruwatari, Takeomi Murata, Taichi Usui: Efficient Synthesis of β‐Primeverosides as Aroma Precursors by Transglycosylation of β‐Diglycosidase from Penicillium multicolor. In: Journal of Carbohydrate Chemistry. Band 24, Nr. 8-9, 1. November 2005, S. 849–863, doi:10.1080/07328300500439413.