Syndiniales

Ordnung der Klasse Syndiniophyceae

Die Syndiniales sind eine Ordnung basaler Dinoflagellaten, die als Parasiten verschiedener mariner Eukaryoten vorkommen. Zu ihren Wirten zählen Krebstiere (Crustacea), Fische, Nesseltiere (Cnidaria), Algen und verschiedene Protisten, darunter Wimpertierchen (Ciliophora alias Ciliata), Radiolarien und sogar andere Dinoflagellaten. Ihre frühere provisorische Bezeichnung ist Marine Alveolata (englisch Marine Alveolates, MALVs).[1][2][3][4]

Syndiniales

Dinospore von Amoebophrya sp. (außerhalb des Wirts)

Systematik
ohne Rang: Diaphoretickes
ohne Rang: Sar
ohne Rang: Alveolata
ohne Rang: Dinoflagellaten (Dinoflagellata)
Klasse: Syndiniophyceae
Ordnung: Syndiniales
Wissenschaftlicher Name
Syndiniales
A. R. Loeblich III, 1976

Beschreibung

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Die trophische Form (vegetative/stoffwechselnde Form oder Wachstumsform) der Syndiniales ist oft mehrkernig und teilt sich schließlich, um bewegliche Sporen (Dinosporen[5]) zu bilden, die zwei Geißeln in typischer Dinoflagellaten-Anordnung haben. Sie haben keine Theca und keine Chloroplasten, und im Gegensatz zu allen anderen Dinoflagellaten-Ordnungen ist der Zellkern nie in Form eins Dinokaryons organisiert. Gute Schemazeichnungen der einzelnen Lebensphasen finden sich auf den DINOFLAJ2-Seiten der American Association of Stratigraphic Palynologists (s. u.). Ein gut untersuchtes Beispiel ist die Gattung (Biologie) Amoebophrya, ein Parasit anderer Dinoflagellaten, der möglicherweise eine Rolle bei der Beendigung von Roten Tiden (einer speziellen Form von Algenblüten) spielt.

Systematik

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Evolution des Mitose-Apparates innerhalb der Alveolata.

Die taxonomische Einordnung der Syndiniales ist schwierig.

Zu dieser Gruppe gehören die 2001 durch direkte Amplifikation von rRNA-Genen aus marinen Pico­plankton­proben entdeckten Linien, die vorläufig als MALV-Gruppe I und II (marine Alveolaten I und II) bezeichnet werden.[6][7][8] Traditionell werden etliche MALV-Gruppen den Syn­diniales zu­ge­ordnet;[8] neuere Studien (ab 2018) zeigen jedoch eine Paraphylie der MALVs als Gesamtheit. Dies deutet darauf hin, dass nur diejenigen Gruppen zu den Syndiniales gehören, die im Stammbaum der Dinoflagellaten eine Schwestergruppe der Dino­karyonten (Kern-Dinoflagellaten, engl. core dinoflagellates: Dinoflagellaten mit einem Dinokaryon) bilden.[3] Die Ordnung wird in der Regel den Dinoflagellaten zugeordnet (mit einer basalen Stellung in deren Stammbaum),[9][8] manchmal aber auch in die Protalveolata[10] eingeordnet.[11]

Aufgrund dieser Erkenntnisse wurden mehrere Gattungen aus den Syndiniales ausgegliedert. Beispielsweise gehörte früher gehörten die Gattung Spiromonas zusammen mit ihrer Familie Spiromonadidae zu dieser Gruppe; die Gattung wurde in Colpodella umbenannt und aufgrund ihrer primitiven Merkmale in ein eigenes Phylum Colpodellida eingeordnet;[12] und auch die Gattung Oxyrrhis wurde in eine eigene Ordnung Oxyrrhinales übergeführt.[13]

Der folgenden (auszugsweisen) Liste liegen als Quellen zugrunde:


* = Angabe ohne Autoronschaft
i = incertae sedis
ℓ = leer (ohne Mitglieder)
Die Typus-Angaben stammen aus der AlgaeBase, die Angaben zu den Lebensräumen stammen aus WoRMS:

Klasse Syndiniophyceae Loeblich III, 1976 (Synonym: Syndinea Chatton 1920 stat. nov. Loeblich 1976[17][18][19]

  • Ordnung Syndiniales(A,N,W)
    – mit botanischer Bezeichnung Syndinida M. Döring 2016(W)[20] – Habitat: m, b
    • Familie (Biologie) Amoebophryaceae(N,W) – Habitat: m
      • Gattung Actinodinium Chatton & Hovasse, 1937(A,W) – Habitat: m, nicht: b, s, t
        • Spezies Actinodinium apsteinii Chatton & Hovasse(W) – Typus, Habitat: m
 Gattung Amoebophrya Koeppen, 1894 (A,N*,W) – Habitat: m; Artenliste:

 
FISH-Aufnahmen von Amoebo­phrya sp. (grün), freischwimmende Dinosporen[5] und im Wirt Akashiwo sanguinea (blau/grün).
 
EM-Aufnahmen von Amoebophrya sp., freischwimmende Dinosporen[5] und im Wirt Akashiwo sanguinea.
  • Spezies Amoebophrya acanthometrae Koeppen, 1894(A,W) – Habitat: m
  • Spezies Amoebophrya ceratii (Koeppen) J.Cachon, 1964(A,W) – Habitat: m
  • Spezies Amoebophrya grassei Cachon, 1964(A,W)
    – früher Umbella hemisphaerica Pojarkov(W) – Habitat: m
  • Spezies Amoebophrya leptodisci Cachon, 1964(A,W) – Habitat: m
  • Spezies Amoebophrya rosei Cachon(A)
  • Spezies Amoebophrya sticholonchae Koeppen(A)
    – vermutlich Schreibvariante von A. stycholonchae Koeppen, 1894
  • Spezies Amoebophrya stycholonchae Koeppen, 1894(A,W) – Typus, Habitat: m
  • Spezies Amoebophrya tintinni Cachon, 1964(A,W) – Habitat: m
  • Spezies Amoebophrya sp. 'Dinophysis'(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. A120(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. A25(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. AT5.2(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. ATSPF7-5(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. OSK2019(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Akashiwo sanguinea(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Alexandrium affine(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Alexandrium catenella(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Alexandrium tamarense(N)
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Ceratium lineatum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Ceratium tripos
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Cochlodinium polykrikoides
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Dinophysis acuminata
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Dinophysis norvegica
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Gymnodinium instriatum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Karlodinium micrum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Karlodinium veneficum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Ostreopsis lenticularis
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Phalacroma rotundatum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Prorocentrum micans
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Prorocentrum minimum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Prorocentrum triestinum
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Scrippsiella sp.
  • Spezies Amoebophrya sp. ex Tripos furca

  • Gattung Caryotoma Hollande, 1953(A)
    • Spezies Caryotoma bernardii Hollande(A) – Typus
  • Gattung Hyalosaccus N. Koeppen, 1899(Aℓ) – Typus Hyalosaccus ceratii N. Koeppen verschoben zu Amoebophrya ceratii (Koeppen) J. Cachon)
  • Familie Duboscquellidae Chatton, 1920(N) bzw. Duboscquellaceae(Ai)
    • Gattung Duboscquella Chatton, 1920[21](A,N*,Wi)
      • Spezies Duboscquella tintinnicola (Lohmann) Chatton(W) – Habitat: m
      • Spezies Duboscquella sp. Hamana/2003(N)
      • Spezies Duboscquella sp. Ishikari/2003(N)
  •  
    Verschiedene Ruderfußkrebse der Familie Para­calanidae, infiziert von Ello­biopsis chattonii. (A,B) Para­calanus indicus mit an­haftenden Para­siten. (C,D) Parvo­calanus crassi­rostris mit diesem Para­siten.
    Familie Ellobiopsidae(N)
    • Gattung Ellobiopsis Caullery, 1910(N)
      • Spezies Ellobiopsis chattonii Caullery, 1910(N)
    • Gattung Thalassomyces (Boschma) Boschma, 1959(N*,W) bzw. Niezab.[22]
      • Spezies Thalassomyces fagei (Boschma) Boschma, 1959(N*,W) bzw. Boschma ex J. E. Kane[23]
      • Spezies Thalassomyces sp. Ello476-1c5(N)
      • Spezies Thalassomyces sp. JDS-2003(N)
  • Familie Eudubosquellidae Coats, Bachvaroff & Delwiche 2012(N)
 Gattung Euduboscquella Coats, Bachvaroff & Delwiche 2012(N) – Artenliste:

  • Spezies Euduboscquella cachoni Coats, 1988(N)
    – mit früheren Bezeichnungen Duboscquella cachonii D. W. Coats, 1988(N) und Duboscquella cachoni D.&nbso;W. Coats(N)
  • Spezies Euduboscquella costata J. H. Jung, J. M. Choi, J. H. Jung & Y. O. Kim, 2015(N)
  • Spezies Euduboscquella crenulata D. W. Coats, T. R. Bachvaroff & C. F. Delwiche, 2012(N)
  • Spezies Euduboscquella triangula Choi, Jung, Kim, Coats & Kim, 2021(N)
    – einschl. Euduboscquella sp. JMC-2019a(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Favella arcuata(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Favella ehrenbergii(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Favella markusovszkyi(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Favella panamensis(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Tintinnopsis sp. 1(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Tintinnopsis sp. 2(N)
  • Spezies Euduboscquella sp. ex Tintinnopsis cf. subacuta(N)

  • Familie Sphaeriparaceae Loeblich III(A)
    • Gattung Atlanticellodinium J. Cachon & M. Cachon-Enjumet, 1965(A)
      • Spezies Atlanticellodinium tregouboffi J. Cachon & M. Cachon-Enjumet 1965(A) – Typus
    • Gattung Sphaeripara Poche, 1911, nom. cons.(A)
      • Spezies Sphaeripara catenata (Neresheimer) Loeblich Jr. & Loeblich III, 1966(A) – Typus
      • Spezies Sphaeripara paradoxa (Neresheimer)(A)
  • Familie Syndiniaceae Chatton, 1920(A,N*,W) – Habittat: m
    • Gattung Atelodinium Chatton(A)
      • Spezies Atelodinium microsporum Chatton 1920(A) – Typus
      • Spezies Atelodinium parasiticum Chatton 1920(A)
 Gattung Hematodinium Chatton & Poisson, 1930(A,N*,W)> – Artenliste:

  • Spezies Hematodinium australe D. A. Hudson & J. D. Shields 1994(A)
  • Spezies Hematodinium perezi Chatton & Poisson, 1930/1931(A,N)
    – mit Schreibvariante Hematodinium perezii Chatton & Poisson, 1930(N) – Typus
  • Spezies Hematodinium sp. 2006ZS(N)
  • Spezies Hematodinium sp. ex Callinectes sapidus(N)
  • Spezies Hematodinium sp. ex Cancer pagurus(N)
  • Spezies Hematodinium sp. ex Carcinus maenas
  • Spezies Hematodinium sp. ex Carcinus maenas Cm753
  • Spezies Hematodinium sp. ex Carcinus maenas Cm887
  • Spezies Hematodinium sp. ex Leptomithrax gaimardii
  • Spezies Hematodinium sp. ex Ovalipes australiensis

 Gattung Merodinium Chatton, 1923(A,Wℓ) – Artenliste:

  • Spezies Merodinium astutum Chatton, nom. inval. 1923(A)
  • Spezies Merodinium borgertii (Hollande, Cachon-Enjumet & Manciet) Hovasse & E.M.Brown 1954(A)
  • Spezies Merodinium brandtii (Hovasse) Chatton 1923(A) – Typus
  • Spezies Merodinium breve Hovasse & E. M. Brown 1954(A)
  • Spezies Merodinium chattonii Hovasse & E. M. Brown 1954(A)
  • Spezies Merodinium dolosum Chatton 1923(A)
  • Spezies Merodinium fallax (Chattan) A. R. Loeblich Jr.(A)
  • Spezies Merodinium globiforme Hollande & Cachon-Enjumet 1953(A)
  • Spezies Merodinium insidiosum Chatton 1923(A)
  • Spezies Merodinium mendax Chatton 1923(A)
  • Spezies Merodinium vernale (Hovasse) Chatton 1952(A)

  • Gattung Solenodinium (Chatton) Chatton, 1952(A,Wℓ) – Habittat: m
    • Spezies Solenodinium densum Hovasse & Brown(A)
    • Spezies Solenodinium leptotaenia Hovasse & E. M. Brown 1954(A)
 Gattung Syndinium Chatton, 1910(A,N*,W) – Habittat: m, nicht: b, s, t; Artenliste:

 
(A) Ruderfußkrebs Para­calanus parvus infi­ziert von Syn­dinium sp.
(B) 1. S. rostra­tum, 2. S. cory­coei, 3. S. tur­bo 4. S. micro­sporum.
  • Spezies Syndinium allognosticum R. Weill 1935(A)
  • Spezies Syndinium belari (Hollande & Cochon-Enjumet) Hollande & Enjumet(A)
  • Spezies Syndinium caryophagum Cachon-Enjumet 1961(A)
  • Spezies Syndinium corycaei Chatton 1938(A)
  • Spezies Syndinium gammari J. F. Manier, A. Fize & H. Grizel 1971(A)
  • Spezies Syndinium globiforme Hollande & Cachon-Enjumet 1953(A)
  • Spezies Syndinium gracile Hollande & Enjumet(A)
  • Spezies Syndinium minutum Chatton(A)
  • Spezies Syndinium oikopleurae Hollande & Fenaux 1975(A)
  • Spezies Syndinium rostratum Chatton(A)
  • Spezies Syndinium turbo Chatton, 1910(A,N,W) – Typus, Habittat: m, nicht: b, s, t
  • Spezies Syndinium sp. ex Corycaeus sp.(N)

  • Gattung Trypanodinium Chatton, 1912(A)
    • Spezies Trypanodinium ovicola Chatton 1912(A) – Typus
  • Familie Syndinidae Chatton, 1910(Wℓ) – Habittat: m, b, nicht: s, t
    – offenbar ein Synonym von Syndiniaceae (bzw. die Mitglieder wurden nach Syndiniaceae verschoben)
  • Mitglieder der Ordnung ohne Familienzuweisung:(A,N)
    • Gattung Ichthyodinium Hollande & J. Cachon, 1952(A,N*,W) – Habittat: m, nicht: b, s, t
      • Spezies Ichthyodinium chabelardi,(N,W)
        – mit Schreibvariante Ichthyodinium chabelardii Hollande & J.Cachon, 1952(A,N) – Habittat: m, nicht: b, s, t
      • Spezies Ichthyodinium sp. ex Anguilla 2BFE(N)
      • Spezies Ichthyodinium sp. PBT(N)
      • Spezies Ichthyodinium sp. PL(N)
      • Spezies Ichthyodinium sp. PS01(N)
      • Spezies Ichthyodinium sp. PS03(N)

Verschiebungen

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  • Die Gattung Coccidinium,[24][25] monotypisch in ihrer Familie Coccidiniaceae (syn. Coccidinidae), gilt nicht mehr als Mitglied der Syndiniales, sondern ist lt. WoRMS unter den Dinoflagellaten incerta sedis.[26] Obwohl sie zusammen mit den Gattungen Amoebophrya und Duboscquella zu den wichtigsten Endoparasiten mariner Dinoflagellaten gehört, ist diese Gattung mit ihren 1934 im Brackwasser in der Nähe von Sète (Frankreich) im Zytoplasma von Dinoflagellaten gefundenen Spezies C. legeri und C. duboscquii nur wenig erforscht (Stand 2000).[27]
  • Die Gattung Caryotoma, lt. AlgaeBase in der Familie Amoebophryaceae, ist lt. WoRMS Mitglied der Familie Oodinidae (in der Dinoflagellaten-Ordnung Blastodiniales).[28]
  • Die Gattung Atlanticellodinium, lt. AlgaeBase in der Familie Sphaeriparaceae, ist lt. WoRMS Mitglied der Familie Blastodinidae (ebenfalls in der Dinoflagellaten-Ordnung Blastodiniales).
  • Sphaeripara, lt. AlgaeBase Typus-Gattung der Familie Sphaeriparaceae, ist nach WoRMS innerhalb der Dinoflagellaten incertae sedis.
  • Die Gattung Ichthyodinium in der NCBI-Taxonomie und bei AlgaeBase ein Mitglied der Syndiniales ohne Familienzuweisung, ist lt. WoRMS Mitglied der Familie Dinophysaceae Bütschli, 1885 (in der Dinoflagellaten-Ordnung Dinophysiales).

Weitere Verschiebungen innerhalb der Ordnung Syndiniales gemäß AlgeaBase:

  • Familie Amoebophryaceae
    • Species Hyalosaccus ceratii N. KoeppenAmoebophrya ceratii (Koeppen) J. Cachon.
    • Gattung Hyalosaccus N. Koeppen, 1899 ⇾ abgeschafft
    • Spezies Actinodinium paradoxum (M. Rose & J. Cachon) Hollande & Enjumet, 1953 ⇾ Cachonella paradoxa (M. Rose & J. Cachon) M. Rose & J. Cachon, 1952
  • Familie Sphaeriparaceae
    • Gattung Neresheimeria Uebel, 1912Lohmanniella (Wimpertierchen). Ausnahmen:
    • Spezies Neresheimeria catenata (Neresheimer) ChattonSphaeripara catenata (Neresheimer) Loeblich Jr. & Loeblich III.
    • Spezies Neresheimeria paradoxa (Neresheimer) Chatton 1920Sphaeripara paradoxa (Neresheimer)
  • Familie Syndiniaceae
    • Spezies Merodinium belari Hollande & Cachon-Enjumet ⇾ Syndinium belari (Hollande & Cochon-Enjumet) Hollande & Enjumet
    • Spezies Solenodinium fallax ChattonMerodinium fallax (Chattan) A. R. Loeblich
    • Spezies Syndinium borgertii Hollande, Cachon-Enjumet & MancietMerodinium borgertii (Hollande, Cachon-Enjumet & Manciet) Hovasse & E. M. Brown
    • Spezies Syndinium borgertii Hollande, Cachon-Enjumet & Manciet ⇾ Merodinium borgertii (Hollande, Cachon-Enjumet & Manciet) Hovasse & E. M. Brown
    • Spezies Syndinium brandtii HovasseMerodinium brandtii (Hovasse) Chatton.
    • Spezies Syndinium vernale HovasseMerodinium vernale (Hovasse) Chatton.

Gattung Syndinium

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Mitotische Kernteilung bei Syndinium. Die Bewegung der Chromosomen wird durch Spindeln außerhalb des Zellkerns (extranukleare Sp.) gesteuert.
 
TEM-Aufnahme eines Ultra­dünn­schnitts mit Trennung der Chromo­somen (Ch) und Zentriolen (weiße Pfeile).

Syndinium ist eine kosmopolitische Gattung parasitischer Dinoflagellaten, die marine planktonische Arten von Ruderfußkrebsen (Copepoden) und Strahlentierchen (Radiolarien) befallen und abtöten.[29] Der Lebenszyklus von Syndinium ist über das Parasiten- und Zoosporenstadium hinaus nicht gut verstanden (Stand 2005).[30]

Im Gegensatz zu anderen Dinoflagellaten verfügt Syndinium wie auch die anderen Mitglieder der Ordnung Syndiniales nicht über das herkömmliche Dinokaryon oder den damit verbundenen Prozess der Dinomitose. Stattdessen besitzen Syndinium-Vertreter weniger, aber größere Chromosomen als die meisten anderen Dinoflagellaten, nämlich nur 4 im Vergleich zu den sonst typischen 20 und mehr.[31] Syndinium zeichnet sich durch mitotische Kernteilungsmechanismen aus, bei denen die Kinetochoren an der Kernmembran befestigt sind und die damit verbundenen V-förmigen Chromosomen durch axial ausgerichtete Mikrotubuli voneinander weggeschoben werden.[32] Diese Methode der Kernteilung ist bei Dinoflagellaten zwar nicht ganz selten, wurde aber erstmals bei Syndinium untersucht.

Gattung Merodinium

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Die Gattung Merodinium wurde beschrieben als marine Parasiten von Strahlentierchen (Radiolarien), die im Zytoplasma ihres Wirts ein plasmodiales Stadium bilden (vgl. Familie der Plasmodien, wiss. Plasmodiidae), aus denen sich nach der Fragmentierung typische Dinosporen[5] bilden. Lebenszyklus, Biochemie und Zytologie des Zellkerns ähneln stark denen der Gattung Syndinium. Daher wurde und wird Merodinium häufig als Synonym von Syndinium betrachtet und wurde (ungültigerweise) als Untergattung zu Syndinium gestellt. Die Abgrenzung zu Syndinium ist verworren, Merodinium-Arten sind aber ausschließlich als marine Parasiten des endo- oder extrakapsulären Zytoplasmas von Radiolarien beschrieben worden.[33]

Gattung Hematodinium

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Hematodinium spp. mit ihren Wirten:
mit Wirt Ovalipes australiensis (Portunoidea-Krabben)
mit Wirten O. australiensis (A) und Leptomithrax gai­mardii (Dreiecks­krab­ben, B)
mit Wirt Calli­nec­tes sapidus (Schwimm­krab­ben)
Phasenkontrastmikroskopie: mit Wirt Carcinus maenas (Gemeine Strand­krabbe)
Histopathologie: mit demselben Wirt

Hematodinium ist eine Gattung innerer Parasiten in der Hämolymphe (dem „Blut“), d. h. im Haemocoel (oder Hydroskelett) mariner Krebstiere (Crustacea: Decapoda und vielleicht Amphipoda) des Nordatlantiks und des Mittelmeers, die ein plasmodiales Stadium ausbildet. Im Gegensatz zur Gattung Syndinium, die ein großes Plasmodium bildet, das mehr oder weniger das gesamte Haemocoel des Wirtes einnimmt, aber später (sekundär) durch Fragmentierung kleinere Plasmodien produziert, werden bei Hematodinium sofort viele kleine Plasmodien mit einer Länge von bis zu 150 µm erzeugt. Die Zellkerne sind vom typischen Syndinium-Typ mit 5 V-förmigen Chromosomen. Die genaue Art, wie Dinosporen[5] gebildet werden und deren Morphologie ist bisher unbekannt (Stand 2017). Die Abgrenzung zu Syndinium ist schwierig und Verwechslungen zwischen beiden eng miteinander verwandten Gattungen sind leicht möglich.[34]

Typusart ist Hematodinium perezi, zu seinen Wirten gehören die Blaukrabbe (Callinectes sapidus), Kaisergranat (Nephrops norvegicus).[35][36][37] und die Schneekrabben (Chionoecetes bairdi, englisch bairdi, tanner or snow crab). Arten dieser Gattung verursachen der kommerziellen Krabbenfischerei wirtschaftlichen Schaden.[36] Sie verursacht unter anderem (vermutlich) die Bitterkrabbenkrankheit (englisch bitter crab disease) in der großen Schneekrabbenfischerei in der Beringsee (Nordpazifik).[36][34]

Gattung Duboscquella

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Duboscquella ist eine Gattung innerer Parasiten mariner von Wimpertierchen (etwa der Ordnung Tintinnida) oder von Dinoflagellaten der Ordnung Noctilucales. Sie sind nach dem französischen Zoologen, Mykologen und Parasitologen Octave Duboscq (1868–1943) benannt.[38][39][40][21] Die Gattung wurde von Édouard (Pierre Léon) Chatton (1920) erstbeschrieben.[41]

Die Dinosporen[5] werden passiv durch Verschlucken übertragen. Im Wirtsorganismus verlieren sie ihre Geißeln und entwickeln sich zu einem trophischen Stadium (Ernährungsstadium). Der Zellkörper (Pisom, vgl. Episom = Außenkörper) ist von einem Schild (einem verdickten Teil des Amphiesmas alias Cortex oder Rinde) – bedeckt, der von einem Faserring (englisch fibrous ring), genannt Perinema, begrenzt wird. Eine trichterförmige Skelettstruktur mit unklarer Funktion, die an diesem Faserring befestigt ist, markiert die ventrale Seite des Parasiten. Einige Arten bilden große Nahrungsvakuolen, bevor die Zellteilung zu zahlreichen geißeltragenden Dinosporen[5] führt.[40]

Die Zellen der Duboscquella-Arten sind ohne Chloroplasten. Da die Infektionsrate der Wirte sehr hoch sein können, wird vermutet, dass der Parasit die Populationsdynamik des Wirts kontrollieren kann.[40]

Gattung Euduboscquella

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Euduboscquella ist eine Gattung basaler Dinoflagellaten, die in Küstengewässern auf der ganzen Welt vorkommt.[42] Sie wurde 2012 aus der Gattung Duboscquella ausgegliedert.[43] Die Mitglieder dieser Gattung sind allesamt intrazelluläre Parasiten, die vor allem Tintinniden (eine Ordnung der Wimpertierchen) infizieren. Ihre Vertreter sind in der Regel in Meeresumgebungen zu finden, wo sie entweder einen Wirt infizieren oder in einem Ruhestadium (vgl. Zyste) auf der Suche nach einem neuen Wirt sind. Die Euduboscquella-Mitglieder besitzen ein mehrrilliges Schild (englisch multi-grooved shield), das ihr Zytoplasma vom Zytoplasma des Wirts trennt und das zur taxonomischen Identifizierung verwendet wird.[44]

Die Dinosporen[5] von Euduboscquella cachoni (früher Duboscquella cachoni) sind biflagellate (doppelt begeißelte) Makrosporen.[40]

Fundort Jangmok Bay, Geojedo (Insel), Südostküste von Korea

Gattung Amoebophrya

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Lebenszyklus von Amoebophrya spp. (grün) und ihrem Wirt Alexandrium fundyense (Pyrocystaceae, blau/rot).
 
FISH-Aufnahmen von Stadien im Lebenszyklus von Alexandrium fundyense (blau/rot) und Amoebophrya spp. (grün)

Die Gattung Amoebophrya umfasst Parasiten, die freilebende Dinoflagellaten infizieren.[45] Die verschiedenen Arten der Gattung befallen wirtsspezifisch unterschiedliche Arten der Dinoflagellaten,[46] so infizieren vorgeschlagene Amoebophrya Dinoflagellaten[47]

  • aus der Ordnung Gymnodiniales: Gymnodiniaceae (Gymnodinium, Cochlodinium, Akashiwo), Kareniaceae (Karlodinium),
  • aus der Ordnung Peridiniales: Peridiniaceae (Scrippsiella), Ostreopsidaceae (Ostreopsis)
  • aus der Ordnung Prorocentrales: Prorocentraceae (Prorocentrum)
  • aus der Ordnung Dinophysiales: Dinophysiaceae (Dinophysis, Phalacroma)
  • aus der Ordnung Gonyaulacales: Pyrocystaceae (Alexandrium), Ceratiaceae (Ceratium, Tripos).

Wirte, die mit bestimmten Amoebophrya-Stämmen wie Amoebophrya ceratii infiziert sind, sind nicht mehr in der Lage, sich fortzupflanzen. Der Parasit beendet seinen Lebenszyklus, indem er den Wirt tötet.[27] Der Parasit vergrößert sich zunächst durch Kernteilungen, ohne dass eine Zytokinese (Zellteilung) erforderlich ist, was zu einem bienenstockähnlichen Aussehen der mehrkernigen Parasitenzellen im Wirt führt. Nach der Tötung des Wirts wird Amoebophrya mobil und wurmförmig (vermiform), teilt sich aber bald in Dinosporen.[5] Diese neuen Dinosporen haben dann nur eine kurze Zeitspanne, um neue Wirte zu finden, da ihre Überlebenszeit im Wasser gering ist.[27]

Die Mitglieder der Gattung wirken als biologisches Kontrollmittel von durch Dinoflagellaten verursachte Algenblüten (Rote Tiden). Wegen der Wirtsspezifität dieser Parasiten[46] muss möglichst genau ermittelt werden, welche Organismen die Blüten verursachen, und welche Parasiten diese infizieren, damit eine solche „biologische“ Bekämpfung möglich ist.[46]

Nach einer 2019 von John et al. veröffentlichten Studie besitzen die Mitochondrien von Amoebophrya ceratii keine DNA und wären damit neben Cryptosporidium parvum (Kryptosporidien) eines der wenigen bekannten Beispiele DNA-freier echter Mitochondrien (Stand 2019).[48] Der Fund (bzw. Nicht-Fund) wurde aber von Kayal & Smith 2021 angezweifelt.[49]

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Schemazeichnungen der verschiedenen Lebensphasen der Syndiniales.
* [] – Memento im Webarchiv vom 4. April 2023.

Einzelnachweise

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  1. C. van den Hoek, D. G. Mann, Hans Martin Jahns: Algae: an Introduction to Phycology. Cambridge University Press, Cambridge 1995, ISBN 0-521-31687-1, S. 277–280 (englisch).
  2. Jon Bråte, Anders K. Krabberød, Jane K. Dolven, Randi F. Ose, Tom Kristensen, Kjell R. Bjørklund, Kamran Shalchian-Tabrizi: Radiolaria associated with large diversity of marine alveolates. In: Protist. 163. Jahrgang, Nr. 5, September 2012, S. 767–777, doi:10.1016/j.protis.2012.04.004, PMID 22658831 (englisch).
  3. a b Jürgen F. H. Strassert, Anna Karnkowska, Elisabeth Hehenberger, Javier del Campo, Martin Kolisko, Noriko Okamoto, Fabien Burki, Jan Janouškovec, Camille Poirier, Guy Leonard, Steven J. Hallam, Thomas A. Richards, Alexandra Z. Worden, Alyson E. Santoro, Patrick J. Keeling: Single cell genomics of uncultured marine alveolates shows paraphyly of basal dinoflagellates. In: The ISME Journal. 12. Jahrgang, Nr. 1, Januar 2018, S. 304–308, doi:10.1038/ismej.2017.167, PMID 28994824, PMC 5739020 (freier Volltext) – (englisch).
  4. Syndiniales (order).
  5. a b c d e f g h i Wiktionary: dinospore (englisch).
  6. Purificación López-García, Francisco Rodríguez-Valera, Carlos Pedrós-Alió, David Moreira: Unexpected diversity of small eukaryotes in deep-sea Antarctic plankton. In: Nature, Band 409, 1. Februar 2001, S. 603–607; doi:10.1038/35054537.
  7. Seung Yeo Moon-van der Staay, Rupert De Wachter, Daniel Vaulot: Oceanic 18S rDNA sequences from picoplankton reveal unsuspected eukaryotic diversity. In: Nature, Band 409, 1. Februar 2001, S. 607–610; doi:10.1038/35054541.
  8. a b c Laure Guillou, M. Viprey, A. Chambouvet, R. M. Welsh, A. R. Kirkham, R. Massana, D. J. Scanlan, Alexandra Z. Worden: Widespread occurrence and genetic diversity of marine parasitoids belonging to Syndiniales (Alveolata). In: Environmental Microbiology. 10. Jahrgang, Nr. 12, Dezember 2008, S. 3349​–3365, doi:10.1111/j.1462-2920.2008.01731.x, PMID 18771501 (englisch). ResearchGate.
  9. Pavel Flegontov, Julius Lukeš: Chapter Six - Mitochondrial Genomes of Photosynthetic Euglenids and Alveolates. In: Advances in Botanical Research, Band 63, 2012, S. 127-153; doi:10.1016/B978-0-12-394279-1.00006-5.
  10. Wikispecies: Protalveolata.
  11. Sina M. Adl, Alastair G. B. Simpson, Christopher E. Lane, Julius Lukeš, David Bass, Samuel S. Bowser, Matthew W. Brown, Fabien Burki, Micah Dunthorn, Vladimir Hampl, Aaron Hei​ss, Mona Hoppenrath, Enrique Lara, Line le Gall, Denis H. Lynn, Hilary McManus, Edward A. D. Mitchell, Sharon E. Mozley-Stanridge, Laura W. Parfrey, Jan Pawlowski, Sonja Rueckert, Laura Shadwick, Conrad L. Schoch, Alexey Smirnov, Frederick W. Spiegel: The Revised Classification of Eukaryotes. In: Journal of Eukaryotic Microbiology, Band 59, Nr. 5, 28. September 2012, S. 429–514; doi:10.1111/j.1550-7408.2012.00644.x, PDF.
  12. Alastair G. Simpson, David J. Patterson: Ultrastructure and identification of the predatory flagellate Colpodella pugnax Cienkowski (Apicomplexa) with a description of Colpodella turpis n. sp. and a review of the genus. In: Systematic Parasitology, Band 33, Nr. 3, S. 187-198; doi:10.1007/BF01531200, ResearchGate.
  13. NCBI Taxonomy Browser: Oxyrrhis (genus).
  14. NCBI Taxonomy Browser: Syndiniales, Details: Syndiniales (order).
  15. Syndiniales, Details: Order Syndiniales A.R.Loeblich III 1982.
  16. WoRMS: Syndiniales (order).
  17. Fernando Gómez, David Moreira, Purificación López-García: Molecular phylogeny of noctilucoid dinoflagellates (Noctilucales, Dinophyceae). In: Protist. 161. Jahrgang, Nr. 3, Juli 2010, S. 466–78, doi:10.1016/j.protis.2009.12.005, PMID 20188628 (englisch).
  18. Fernando Gómez: A checklist and classification of living dinoflagellates (Dinoflagellata, Alveolata). In: CICIMAR Oceánides. 27. Jahrgang, Nr. 1, Juni 2012, S. 65–140, doi:10.37543/oceanides.v27i1.111 (englisch). ResearchGate.
  19. Systematics of Protozoa. The World of Protozoa, Rotifera, Nematoda and Oligochaeta (WPRNO), National Institute for Environmental Studies (NIES), Japan
  20. GBIF: Syndinida (synonym).
  21. a b Duboscquella Chatton 1920. Auf: Encyclopedia of Life (EOL), by: National Museum of Natural History.
  22. Thalassomyces Niezab. Auf: Index Fungorum.
  23. Thalassomyces fagei Boschma ex J.E. Kane. Auf: Index Fungorum.
  24. Édouard Chatton, Berthe Biecheler: Les Coccidinidae, dinoflagellés coccidiomorphes parasites de dinoflagellés, et le phylum des Phytodinozoa. In: Comptes Rendus Hebdomadaires Des Séances De l'Académie des Sciences, S. 252–255, 16. Juli 1934 (französisch).
  25. Édouard Chatton, Berthe Biecheler: Documents nouveaux relatifs aux coccidinides (dinoflagellés parasites). La sexualité du Coccidium meslini, n. sp. In: Académie des Sciences: Mémoires et Communications des Membres et des Correspondants de l'Académie, 28. September 1936 (französisch).
  26. WoRMS: Coccidinium Chatton & Biecheler, 1934.
  27. a b c Wonho Yih, D. Wayne Coats: Infection of Gymnodinium sanguineum by the dinoflagellate Amoebophrya sp.: effect of nutrient environment on parasite generation time, reproduction, and infectivity. In: The Journal of Eukaryotic Microbiology, Band 47, Nr. 5, September 2000, ISSN 1066-5234, S. 504–510; doi:10.1111/j.1550-7408.2000.tb00082.x, PMID 11001148 (englisch).
  28. WoRMS: Caryotoma Hollande, 1953.
  29. Édouard Chatton: Sur l'existence de dinoflagellés parasites coelomiques. Les Syndinium chez les copépodes parasites (engl.: On the existence of coelom Dinoflagellate parasites. The Syndinium in pelagic copepods). In: Comptes Rendus Hebdomadaires Des Séances De l'Académie des Sciences, Band 151, 1910, S. 654–656.
  30. Alf Skovgaard, Ramon Massana, Vanessa Balagué, Enric Saiz: Phylogenetic Position of the Copepod-Infesting Parasite Syndinium turbo (Dinoflagellata, Syndinea). In: Protist, Band 156, Nr. 4, 13. Dezember 2005, S. 413-423; doi:10.1016/j.protis.2005.08.00 (englisch).
  31. Hans Ris: Primitive mitotic mechanisms. In: Elsevier: Biosystems, Band 7, Nr. 3-4, November 1975, S. 298-304; doi:10.1016/0303-2647(75)90002-7.
  32. Hans Ris, Donna F. Kubai: An Unusual Mitotic Mechanism in the Parasitic Protozoan Syndinium sp. In: Rockefeller University Press: Journal of Cell Biology (JCB), Band 60, Nr. 3, S. 702–720; doi:10.1083/jcb.60.3.702.
  33. AlgaeBase: Merodinium Chatton, 1923.
  34. a b AlgaeBase: Hematodinium Chatton & Poisson, 1930.
  35. Victor S. Kennedy, Lewis Eugene Cronin: Blue Crab: Callinectes sapidus. Maryland Sea Grant College, College Park, Md, 2007, ISBN 978-0-943676-67-8 (englisch).
  36. a b c Bruce F. Phillips: Lobsters: Biology, Management, Aquaculture and Fisheries. Blackwell Pub., Oxford, UK ; Ames, Iowa 2006, ISBN 978-1-4051-2657-1, doi:10.1002/9781118517444 (englisch).
  37. Yuan Y. Li, Xiao A. Xia, Qing Y. Wu, Wen H. Liu, You S. Lin: Infection with Hematodinium sp. In mud crabs Scylla serrata cultured in low salinity water in southern China. In: Diseases of Aquatic Organisms, Band 82, Nr. 2, 2008, S. 145–150; doi:10.3354/dao01988, PMID 19149377, PDF, Epub 20. November 2008 (englisch).
  38. Ai Harada, Susumu Ohtsuka, Takeo Horiguchi: Species of the parasitic genus Duboscquella are members of the enigmatic Marine Alveolate Group I. In: Protist. 158. Jahrgang, Nr. 3, 18. Juli 2007, S. 337–347, doi:10.1016/j.protis.2007.03.005, PMID 17560828, HDL: 2115/30140 (englisch).
  39. Lotte Burkhardt: Eine Enzyklopädie zu eponymischen Pflanzennamen. (deutsch: Encyclopedia of eponymic plant names). Botanic Garden and Botanical Museum, Freie Universität Berlin, Berlin 2022, ISBN 978-3-946292-41-8, doi:10.3372/epolist2022.
  40. a b c d AlgaeBase: Duboscquella Chatton, 1920.
  41. Édouard Chatton: Les Péridiniens parasites: morphologie, reproduction, éthologie. Thesis, Faculté des Sciences de Paris, 1919. In: Archives de zoologie expérimentale et générale (Arch. Zool. Exp. Gen.), Band 59, S. 322-325, 1920.
  42. J.-H. Jung: Euduboscquella costatan. sp. (Dinoflagellata, Syndinea), an Intracellular Parasite of the Ciliate Schmidingerella arcuata: Morphology, Molecular Phylogeny, Life Cycle, Prevalence, and Infection Intensity. In: Journal of Eukaryotic Microbiology. 63. Jahrgang, Nr. 1, 2015, S. 3–15, doi:10.1111/jeu.12231, PMID 25963420 (englisch).
  43. WoRMS: Duboscquella Chatton, 1920.
  44. Coats, D. W. (2012). "Revision of the Family Duboscquellidae with Description of Euduboscquella crenulata n. gen., n. sp. (Dinoflagellata, Syndinea), an Intracellular Parasite of the Ciliate Favella panamensis Kofoid & Campbell". Journal of Eukaryotic Microbiology. 59 (1): 1–11. doi:10.1111/j.1550-7408.2011.00588.x. PMID 22221918
  45. John J. Miller, Charles F. Delwiche, D. Wayne Coats: Ultrastructure of Amoebophrya sp. and its Changes during the Course of Infection. In: Protist. 163. Jahrgang, Nr. 5, September 2012, S. 720–745, doi:10.1016/j.protis.2011.11.007, PMID 22209083 (englisch).
  46. a b c Sunju Kim: Patterns in host range for two strains of Amoebophrya (Dinophyta) infecting thecate dinoflagellates: Amoebophrya spp. ex Alexandrium affine and ex Gonyaulax polygramma. In: Journal of Phycology, Band 42, Nr. 6, 23. Dezember 2006, S. 1170 - 1173; doi:10.1111/j.1529-8817.2006.00277.x, AGR: IND606376613, ResearchGate (englisch).
  47. NCBI Taxonomy Browser: Amoebophrya.
  48. Uwe John, Yameng Lu, Sylke Wohlrab, Marco Groth, Jan Janouškovec, Gurjeet S. Kohli, Felix C. Mark, Ulf Bickmeyer, Sarah Farhat, Marius Felder, Stephan Frickenhaus, Laure Guillou, Patrick J. Keeling, Ahmed Moustafa, Betina M. Porcel, Klaus Valentin, Gernot Glöckner: An aerobic eukaryotic parasite with functional mitochondria that likely lacks a mitochondrial genome. In: Science Advances, Band 5, Nr. 4, 24. April 2019; doi:10.1126/sciadv.aav1110. Dazu:
  49. Ehsan Kayal, David R. Smith: Is the Dinoflagellate Amoebophrya Really Missing an mtDNA? In: Molecular Biology and Evolution, Band 38, Nr. 6, Juni 2021, S. 2493​–2496; doi:10.1093/molbev/msab041, Epub: 10. Februar 2021.